• Non ci sono risultati.

Abbreviazioni utilizzate nel testo 2-AG: 2-arachidonoil glicerolo A1: recettore adenosico A1 AA: acido arachidonico AACOCF3: arachidonil trifluorometil chetone ACEA: arachidonil-2

N/A
N/A
Protected

Academic year: 2021

Condividi "Abbreviazioni utilizzate nel testo 2-AG: 2-arachidonoil glicerolo A1: recettore adenosico A1 AA: acido arachidonico AACOCF3: arachidonil trifluorometil chetone ACEA: arachidonil-2"

Copied!
9
0
0

Testo completo

(1)

87

Abbreviazioni utilizzate nel testo

2-AG: 2-arachidonoil glicerolo

A1: recettore adenosico A1

AA: acido arachidonico

AACOCF3: arachidonil trifluorometil chetone

ACEA: arachidonil-2

'

-cloroetilamide

AEA: anandamide

CB1

: recettore cannabinoide di tipo 1

CB2

: recettore cannabinoide di tipo 2

COX-1: prostaglandin-endoperossido sintetasi 1 o ciclossigenasi 1

COX-2: prostaglandin-endoperossido sintetasi 2 o ciclossigenasi 2

DAGL α/β: diacilglicerol lipasi α/β

DEPC: dietilpirocarbonato

DMSO: dimetilsolfossido

ECS: sistema endocannabinoide

EDTA: acido etilendiamminotetraacetico

FAAH: fatty acid amide hydrolase

FBS: siero fetale bovino

GAPDH: gliceraldeide 3-fosfato deidrogenasi

GPR55: G protein-coupled receptor 55

(2)

88

KW-3902: rolofillina

LPI: α-lisofosfatidilinositolo

MAGL: monoacilglycerol lipasi

MetAEA: metanandamide

NAPE-PLD: N- arachidonoil fosfatidiletanolamina fosfolipasi D

NArPE o NAPE: N-arachidonoil fosfatidiletanolamina

OA: acido oleico

OAE: virodamina

PA: acido palmitico

PEA: palmitoil etanolamide

PG: prostaglandine

PLA

2

: fosfolipasi A

2

PPAR : peroxisome proliferator-activated receptor

RF: RNase Free

RT-PCR: reverse transcriptase-polymerase chain reaction

TNM: Tumor Node Metastases

TRPV1: transient receptor potential cation channel (subfamily V

member 1)

(3)

89

Bibliografia

Algazi A.P., Soon C.W., Daud A.I. (2010) Treatment of cutaneous melanoma: current approaches and future prospects. Cancer Manag. Res. , 2, 197-211.

Andradas C., Caffarel M.M., Pérez-Gómez E., Salazar M., Lorente M., Velasco G., Guzmán M., Sánchez C. (2011) The orphan G protein-coupled receptor GPR55 promotes cancer cell proliferation via ERK. Oncogene , 30(2), 245-52.

Balch C.M., Gershenwald J.E., Soong S.J., Thompson J.F., Atkins M.B., Byrd D.R., Buzaid A.C., Cochran A.J., Coit D.G., Ding S., Eggermont A.M., Flaherty K.T., Gimotty P.A., Kirkwood J.M., McMasters K.M., Mihm M.C. Jr, Morton D.L., Ross M.I., Sober A.J., Sondak V.K. (2009) Final version of 2009 AJCC melanoma staging and classification. J. Clin. Oncol. , 27(36), 6199-6206.

Bandarchi B., Ma L., Navab R., Seth A., Rasty G. (2010) From melanocyte to metastatic malignant melanoma. Dermatol. Res. Pract. , pii: 583748.

Beddingfield F.C. (2003) The melanoma epidemic: res ipsa loquitur. Oncologist. ,

8(5), 459-465.

Blazquez C., Carracedo A., Barrado L., Real P.J., Fernández-Luna J.L., Velasco G., Malumbres M., Guzmán M. (2006) Cannabinoid receptors as novel targets for the treatment of melanoma. FASEB J. , 20(14), 2633-2635.

Bogenrieder T. and Herlyn M. (2002) Cell-surface proteolysis, growth factor

activation and intercellular communication in the progression of melanoma. Crit. Rev.

Oncol. Hematol. , 44(1), 1-15.

Broekaert S.M.C. (2010) Genetic and morphologic features for melanoma classification. Pigment Cell Melanoma Res , 23(6), 763-770.

Bundscherer A., Hafner C., Maisch T., Becker B., Landthaler M., Vogt T. (2008 ) Antiproliferative and proapoptotic effects of rapamycin and celecoxib in malignant melanoma cell lines. Oncol. Rep. , 19(2), 547-553.

Chamberlain A. and Ng J. (2009) Cutaneous melanoma: atypical variants and presentations. Aust. Fam. Physician. , 38(7), 476-482.

Di Marzo V. (2009) The endocannabinoid system: its general strategy of action, tools for its pharmacological manipulation and potential therapeutic exploitation.

Pharmacol. Res. , 60(2), 77-84.

Fogli S., Nieri P., Chicca A., Adinolfi B., Mariotti V., Iacopetti P., Breschi M.C., Pellegrini S. ( 2006) Cannabinoid derivatives induce cell death in pancreatic MIA PaCa-2 cells via a receptor-independent mechanism. FEBS Lett. , 580(7), 1733-1739.

(4)

90

Fowler C.J. (2007) The contribution of cyclooxygenase-2 to endocannabinoid metabolism and action. Br. J. Pharmacol. , 152(5), 594-601.

Galve-Roperh I., Sánchez C., Cortés M.L., Gómez del Pulgar T., Izquierdo M., Guzmán M. (2000) Anti-tumoral action of cannabinoids: involvement of sustained ceramide accumulation and extracellular signal-regulated kinase activation. Nat. Med.

, 6(3), 313-319.

Gandini S., Sera F., Cattaruzza M.S., Pasquini P., Picconi O., Boyle P., Melchi C.F (2005) Meta-analysis of risk factors for cutaneous melanoma: II. Sun exposure. Eur.

J. Cancer. , 41(1), 45-60.

Gómez del Pulgar T., Velasco G., Sánchez C., Haro A., Guzmán M. (2002) De novo-synthesized ceramide is involved in cannabinoid-induced apoptosis. Biochem. J. ,

363(1), 183-188.

Grimaldi C. and Capasso A. (2011) The endocannabinoid system in the cancer therapy: an overview. Curr. Med. Chem. , 18(11), 1575-1583.

Guzman M. (2003) Cannabinoids: potential anticancer agents. Nat. Rev. Cancer ,

3(10), 745-755.

Henstridge C.M., Balenga N.A., Ford L.A., Ross R.A., Waldhoer M., Irving A.J. (2009) The GPR55 ligand L-alpha-lysophosphatidylinositol promotes RhoA-dependent Ca2+ signaling and NFAT activation. FASEB J., 23(1), 183-193. Henstridge C.M., Balenga N.A., Schröder R., Kargl J.K., Platzer W., Martini L., Arthur S., Penman J., Whistler J.L., Kostenis E., Waldhoer M., Irving A.J. (2010) GPR55 ligands promote receptor coupling to multiple signalling pathways. Br. J.

Pharmacol. , 160(3), 604-614.

Huang L., Ramirez J.C., Frampton G.A., Golden L.E., Quinn M.A., Pae H.Y., Horvat D., Liang L.J., DeMorrow S. (2011) Anandamide exerts its antiproliferative actions on cholangiocarcinoma by activation of the GPR55 receptor. Lab. Invest. , 91(7), 1007-1017.

Johnson J.P. (2000) Cell adhesion molecules in the development and progression of malignant melanoma. Cancer Metastasis Rev. , 18(3), 345-357.

Lauckner J.E. (2008) GPR55 is a cannabinoid receptor that increases intracellular calcium and inhibits M current. Proc. Natl. Acad. Sci. USA , 105(7), 2699-2704. MacKie R.M., Hauschild A., Eggermont A.M. (2009) Epidemiology of invasive cutaneous melanoma. Ann. Oncol. , 20(6), 1-7.

Markovic S.N., Erickson L.A., Rao R.D., Weenig R.H., Pockaj B.A., Bardia A., Vachon C.M., Schild S.E., McWilliams R.R., Hand J.L., Laman S.D., Kottschade

(5)

91

L.A., Maples W.J., Pittelkow M.R., Pulido J.S., Cameron J.D., Creagan E.T. (2007) Malignant melanoma in the 21st century, part 1: epidemiology, risk factors,

screening, prevention, and diagnosis. Mayo Clin. Proc. , 82(3), 364-380.

Markovic S.N., Erickson L.A., Rao R.D., Weenig R.H., Pockaj B.A., Bardia A., Vachon C.M., Schild S.E., McWilliams R.R., Hand J.L., Laman S.D., Kottschade L.A., Maples W.J., Pittelkow M.R., Pulido J.S., Cameron J.D., Creagan E.T. (2007 ) Malignant melanoma in the 21st century, part 2: staging, prognosis, and treatment.

Mayo Clin. Proc. , 82(4), 490-513.

Massi P., Valenti M., Vaccani A., Gasperi V., Perletti G., Marras E., Fezza F., Maccarrone M., Parolaro D. (2008) 5-Lipoxygenase and anandamide hydrolase (FAAH) mediate the antitumor activity of cannabidiol, a non-psychoactive cannabinoid. J. Neurochem. , 104(4), 1091-1100.

Merighi S., Baraldi G., Gessi S., Iannotta V., Klotz K.N., Leung E., Mirandola P., Tabrizi M.A., Varani K., Borea P.A. (2003) Adenosine receptors and human melanoma. Drug Dev. Res. , 58(4), 377–385.

Michiels J.F., Perrin C., Leccia N., Massi D., Grimaldi P., Wagner N. (2010)

PPARbeta activation inhibits melanoma cell proliferation involving repression of the Wilms' tumour suppressor WT1. Pflugers Arch. , 459(5), 689-703.

Nørgaard C., Glud M., Gniadecki R. (2011) Are all melanomas dangerous? Acta

Derm. Venereol. , 499-503.

Oesch S. and Gertsch J. (2009) Cannabinoid receptor ligands as potential anticancer agents--high hopes for new therapies? J. Pharm. Pharmacol. , 61(7), 839-853.

Oka S., Nakajima K., Yamashita A., Kishimoto S., Sugiura T. (2007) Identification of GPR55 as a lysophosphatidylinositol receptor. Biochem. Biophys. Res. Commun. ,

362(4), 928-34.

Oláh M., Milloh H., Wenger T. (2008) The role of endocannabinoids in the regulation of luteinizing hormone and prolactin release. Differences between the effects of AEA and 2AG. Mol. Cell. Endocrinol. , 286(1), 36-40.

Palmieri G., Capone M., Ascierto M.L., Gentilcore G., Stroncek D.F., Casula M., Sini M.C., Palla M., Mozzillo N., Ascierto P.A. (2009) Main roads to melanoma. J.

Transl. Med. , 7, 86.

Parkin D.M. et al. (2005) Global cancer statistics, 2002. CA Cancer J. Clin. , 55, 74-108.

Pertwee R.G. (2010) Receptors and channels targeted by synthetic cannabinoid receptor agonists and antagonists. Curr. Med. Chem. , 17(14), 1360-1381.

(6)

92

Ross R.A. (2011) L-α-lysophosphatidylinositol meets GPR55: a deadly relationship.

Trends Pharmacol. Sci.. , 32(5), 265-269.

Ryberg E., Larsson N., Sjögren S., Hjorth S., Hermansson N.O., Leonova J., Elebring T., Nilsson K., Drmota T., Greasley P.J. (2007) The orphan receptor GPR55 is a novel cannabinoid receptor. Br. J. Pharmacol. , 152(7), 1092-1101.

Sarfaraz S., Adhami V.M., Syed D.N., Afaq F., Mukhtar H. (2008) Cannabinoids for cancer treatment: progress and promise. Cancer Res., 68(2), 339-342.

Sharir H. and Abood M.E. (2010) Pharmacological characterization of GPR55, a putative cannabinoid receptor. Pharmacol Ther. , 126(3), 301-313.

Soh J.W., Kazi J.U., Li H., Thompson W.J., Weinstein I.B. (2008) Celecoxib-induced growth inhibition in SW480 colon cancer cells is associated with activation of protein kinase G. Mol. Carcinog. , 47(7), 519-525.

Van Dross R.T. (2009) Metabolism of anandamide by COX-2 is necessary for endocannabinoid-induced cell death in tumorigenic keratinocytes. Mol. Carcinog. ,

48(8), 724-732.

Van Sickle M.D., Duncan M., Kingsley P.J., Mouihate A., Urbani P., Mackie K., Stella N., Makriyannis A., Piomelli D., Davison J.S., Marnett L.J., Di Marzo V., Pittman Q.J., Patel K.D., Sharkey K.A. (2005) Identification and functional

characterization of brainstem cannabinoid CB2 receptors. Science , 310(5746), 329-332.

Wolchok J.D.and Saenger Y.M. (2007) Current topics in melanoma. Curr. Opin.

(7)

93

Indice figure

Figura 1: Tipologie di melanoma extracutaneo... 5 Figura 2. Struttura della pelle. In dettaglio: strato basale dell'epidermide e

disposizione dei melanociti rispetto alle cellule che lo compongono. ... 6 Figura 3. Istotipi di melanoma (classificazione utilizzata dalla World Health

Organization, WHO). ... 9 Figura 4. Variazione dell’incidenza del melanoma cutaneo in Stati selezionati dal 1965 al 2005. ... 11 Figura 5. Tasso di incidenza globale del melanoma in entrambi i sessi, range di età 0-85.* ... 12 Figura 6. Curve di sopravvivenza rispetto a: A) le diverse categorie T, B) stadi I e II diagnosticati (dati ottenuti da American Joint Committee on Cancer Melanoma

Staging Database). ... 19 Figura 7. Curve di sopravvivenza rispetto a: C) le diverse categorie N, D) stadio III diagnosticato (dati AJJC Melanoma Staging Database). ... 20 Figura 8. Rappresentazione schematica dei signalling pathway associati all'attivazione dei recettori cannabinoidi indotta da CB agonisti. ... 24 Figura 9. Strutture dei recettori umani cannabinoidi CB1 e CB2. ... 26 Figura 10. Strutture chimiche dei composti endocannabinoidi individuati fino ad oggi. ... 28 Figura 11. Rappresentazione schematica dell’inattivazione degli endocannabinodi (Fowler C.J., 2007). ... 29 Figura 12. Principali signalling pathways coinvolti nell’azione anticancro esercitata da agonisti cannabinoidi (Oesch S. and Gertsch J., 2009). ... 33 Figura 13. Possibili target di composti cannabinoidi e principali signalling pathways coinvolti nell’azione anticancro. ... 35 Figura 14. Signalling pathway individuati fino ad oggi innescati dal GPR55. ... 37 Figura 15. Strutture dei composti utilizzati nello studio. ... 45 Figura 16. Fotomicrografica delle cellule A375 a bassa densità (sinistra) ed alta densità (destra) di crescita. ... 46 Figura 17. A: Bioconversione del substato WST-1 in sale di formazano solubile. B: risultato di un esperimento visualizzato con WST-1. 1) indica i pozzetti che

contengono solo cellule e mezzo, 2) indica pozzetti che contengono mezzo, cellule e WST-1: più scuro è il colore, più forte è l’attività metabolica delle cellule. ... 53 Figura 18. Elettroforesi su gel di agarosio per il prodotto di PCR con primer relativi alla GAPDH. ... 65 Figura 19. Elettroforesi su gel di agarosio per il prodotto di PCR con primer relativi ai recettori CB1 e CB2. ... 66

(8)

94

Figura 20. Elettroforesi su gel di agarosio per il prodotto di PCR con primer relativi al GPR55 e al TRPV1... 67 Figura 21. Elettroforesi su gel di agarosio dell’amplificato ottenuto con primer per PPARα e PPARγ. ... 68 Figura 22. Elettroforesi su gel di agarosio per il prodotto di PCR per l'amplificazione della COX-1 e della COX-2. ... 68 Figura 23. Elettroforesi su gel di agarosio per il prodotto di PCR ottenuto con primer relativi al recettore A1. ... 69 Figura 24. Riduzione della vitalità cellulare della linea A375, dopo trattamento con AEA (sinistra) e 2-AG (destra), in un range di concentrazione 0,1-100 μM, dopo 48h di esposizione, DMEM+1% di siero. ... 71 Figura 25. Riduzione della vitalità sulla linea cellulare A375, inseguito a trattamento con capsaicina, 48 ore di esposizione, 1% FBS. ... 73 Figura 26. Rappresentazione schematica del ruolo del FAAH, MAGL e COX-2 sul metabolismo di AEA, 2-AG e altri endocannabinoidi (Fowler C.J., 2007)... 73 Figura 27. Riduzione della vitalità cellulare della linea A375, dopo trattamento con AEA, a concentrazioni variabili (0,1-100μM), e Rofecoxib (1μM). In rosso: curva dell'AEA (0,1-100μM). In nero: curva AEA+ Rofecoxib. ... 74 Figura 28. Riduzione della vitalità cellulare sulla linea A375, dopo trattamento con Met-AEA (sinistra) e ACEA (destra) nel range di concentrazione 0,1-100μM, 48h di esposizione. ... 75 Figura 29. Riduzione della vitalità cellulare della linea A375, dopo trattamento con JWH133 (0,1-100μM), 48 ore di esposizione, 1% FBS. ... 76 Figura 30. Riduzione della vitalità cellulare della linea A375, dopo trattamento con AM251 nel range di concentrazione 0,1-50 μM, per 48 ore di esposizione, 1% di FBS. ... 77 Figura 31. Riduzione della vitalità cellulare sulla linea A375, dopo trattamento con AACOCF3, nel range di concentrazioni 0,1-100μM, con tempi di esposizione di 48h (sinistra) e 72h (destra), in presenza dell'1% di FBS. ... 78 Figura 32. Effetto sulla vitalità cellulare della contemporanea somministrazione di AACOCF3 e AM251. A) Effetto sulla vitalità dopo 48h di esposizione, 1%FBS. B) Effetto sulla vitalità dopo 72h di esposizione, 1% FBS. ... 79 Figura 33. Effetto sulla vitalità cellulare di composti COX-inibitori, dopo 48h di esposizione, 1% FBS. A) Riduzione della vitalità cellulare dopo somministrazione di celecoxib, range di concentrazione 0,1-150μM. B) Effetto sulla vitalità cellulare dopo somministrazione di rofecoxib, 0,1-100μM. C) Effetto sulla vitalità cellulare dopo somministrazione di indometacina, 0,1-100μM. ... 82

(9)

95

Indice tabelle

Tabella 1. Incidenza del melanoma in Stati selezionati, comparata tra uomini e donne, periodo 1998-2002 [MacKie R.M., 2009]. ... 13 Tabella 2. Fattori di rischio suddivisi in base alle evidenze ottenute riguardo il loro coinvolgimento nell'eziologia della malattia [Markovic S.N. et al., 2007]. ... 14 Tabella 3. TNM staging categories: categorie di stadiazione del melanoma cutaneo, secondo il TNM staging system aggiornato al 2009. ... 16 Tabella 4. Classificazione AJCC stadi anatomici del melanoma cutaneo, aggiornata al 2009. ... 18 Tabella 5. Composti cannabinoidi e relativa azione sui recettori CB1, CB2, GPR55.38 Tabella 6. Profili sui recettori CB dei composti cannabinoidi saggiati. ... 43 Tabella 7. Sequenze dei primer utilizzati. Tutti gli oligo sono stati forniti dalla Sigma Genosys. ... 48 Tabella 8. Protocolli di PCR utilizzati e lunghezza degli amplificati attesi. ... 62 Tabella 9. Profilo di espressione qualitativa di target valutati tramite RT-PCR. Simboli: + : espresso - : non espresso ... 70

Riferimenti

Documenti correlati

All these issues suggest the need to complement the analysis of the traditional channel through wich corruption affects illegal waste disposal (via enforcement efforts) with an

Da quanto sopra, è evidente quanto siano impattanti le RTV "trasversali" V.1 e V.2 nella progettazione della sicurezza antincendio in molte attività, soprattutto di

f) garantisce la presenza di mezzi di estinzione idonei alla classe di incendio ed al livello di rischio presenti sul luogo di lavoro, tenendo anche conto

Pubblicazione realizzata da Inail Dipartimento innovazioni tecnologiche e sicurezza degli impianti, prodotti e insediamenti antropici Coordinamento scientifico Luca Rossi Autori..

Tiberio Rabboni, Assessore Agricoltura, economia ittica, attività faunistico-venatoria della Regione Emilia-Romagna. Utilizzo del RUC: alcuni esempi

La registrazione EMAS ha consentito il miglioramento continuo delle prestazioni ambientali del Comune di Spo- leto grazie all’applicazione e alla valutazione obiettiva e periodica di

AREA DIREZIONE TITOLO E SVILUPPO D’IMPRESA At laceari atiuntur sitin nest occum elendiaMos dolo ex eatur apis essunt pedis ius, num verum.. AREA COMUNICAZIONE, RISORSE

The WHO Traditional Medicine Strategy 2014-2023 will help health care leaders to develop solutions that contribute to a broader vision of improved health and patient autonomy.