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Sarriò e collaboratori [184] hanno dimostrato che i recettori adenosina A1 interagiscono con una proteina della famiglia delle proteine della scossa di calore. Dalla cromatografia di affinità la scossa di calore proteina analoga hsc73 è stata identificata come un componente del cytosolic capace di interagire con il recettore del terzo loop intracellulare. Come dimostrato dalla risonanza di superficie del plasmon, i recettori A1 purificati interagiscono specificatamente con hsc73 con una costante di dissociazione nella gamma nanomolar (0,5 ± 0,1 nM). L’interazione recettore hsc73/A1 conduce a una riduzione marcata nell'affinità dei ligandi di agonista del recettore A1, una riduzione di legatura di antagonista del recettore A1 ed evita l'attivazione delle proteine G, come dedotto da [S]GTPyS i test di legatura. In modo interessante, quest'effetto sulla legatura di agonista del recettore A1 era più forte di quello esercitato dall’analogo nucleotide della guanina, che separa dei recettori dalle proteine G ed è stato completamente evitato da ADA, che interagisce con i domini extracellulari dei recettori A1. Come valutato dall'immunoprecipitation, un'alta percentuale di recettori A1 nelle cellule lysates sono agganciati a hsc73. I membri della famiglia dell'hsp70 interagisce con un numero di proteine cellulari. Dovuto alla funzione della compagnia molecolare delle proteine hsp70, appaiono capaci del riconoscimento delle forme delle proteine non-native. Questo non è il caso per i recettori A1 per alcune ragioni. Uno è dovuto al fatto che i recettori A1 solubilizzati sono molto sensibili alla composizione del mezzo, che colpisce la legatura dei ligandi alla molecola solubile. Così, una combinazione precisa di detergente ed i sali è richiesta a conseguire un’alto recupero dei siti di legame nelle preparazioni solubilizzate dei recettori A1. L'effetto forte della concentrazione nanomolare del hsc73 sulla legatura di ligandi ai recettori A1 purificati solubili è la prova per un'interazione specifica tra hsc73 ed i recettori A1 funzionali. La specificità dell'interazione è stata dimostrata anche nelle culture primarie dei neuroni dove altri GPCR non sono colocalizzati con hsc 73. D'altra parte, la colocalization tra i recettori A1 e hsc73 non è limitata a una zona specifica della cellula, anche nelle cellule esprimendo naturalmente le proteine, e questo è la prova che l'interazione accade con i recettori completamente piegati

funzionali. A prescindere dal ruolo regolatore dell'interazione nella legatura di ligandi, ci sono dei dati che sostengono l'idea che hsc73 è pertinente per il traffico dei recettori A1. In realtà, la localizzazione tra hsc73 ed i recettori A1 è stato rilevato nelle regioni specifiche del cervelletto del topo e nei corpi cellulari nervosi dei neuroni corticali ma non nelle dendriti o nelle sinapsi. Inoltre, sembra che l’internalizzazione del recettore di agonista-indotto conduce all'endocytosis dei recettori A1 da due tipi di vescicola qualitativamente diversi, uno in cui è localizzato nei recettori A1 e hsc73 ed un altro in cui hsc73 è assente. Questi risultati aprono la possibilità interessante che il segnale ed il traffico di GPCR potrebbe essere regolato dalle proteine di scossa di calore. Le nuove scoperte presentate da Sarriò [184] suggeriscono un ruolo specifico per le proteine hsp70 nel regolare l'attivazione e l'operazione di recettori A1. Sebbene un ruolo pertinente per la compagnia nel segnalare dai recettori di ormone steroide è stato già dimostrato, i nostri risultati sono la prima prova che suggerisce un controllo da hsc73 del segnale tramite GPCR di plasma membrana. Dovrebbe essere anche notato che questo membro del GPCR può essere diversamente regolato da una proteina che interagisce con i domini extracellulari del recettore e da una proteina del cytosolic che interagisce con il terzo loop intracellulare del recettore.

20.CONCLUSIONI

Questa nuova strada nel studiare la formazione dei complessi eterodimerici apre la possibilità di scoprire i meccanismi molecolari, fisiologici e patologici finora sconosciuti ed allo stesso tempo apre anche un campo nello sviluppo di farmaci che dovrebbero essere specificatamente mirati a influenzare la formazione di complessi proteina/proteina o a modulare la funzione di questi complessi proteici. Bisogna tener conto che le interazioni proteina/proteina molto spesso includono parti della sequenza proteica. Così è difficile sviluppare molecole di basso peso molecolare capaci di alterare l’interazione della proteina G. Comunque, anche piccole proteine sono troppo grandi ad essere usate come farmaci. Così, diviene importante l'uso di piccoli peptidi o meglio molecole peptidiche mimetiche come farmaci. Un approccio importante nello sviluppo di peptidi che ostacolano le interazioni proteina/proteina è quello di sostituire qualche amminoacido naturale con amminoacido non naturali.

Come possibili bersagli per l'azione dei farmaci sui complessi eteromerici, il recettore a proteina G o l'adenilato ciclasi sono i migliori bersagli.

Oltre al classico approccio mirato all'attivazione o all'inibizione del recettore dovuto all'occupazione del farmaco nella tasca di legame per il ligando naturale, è possibile concepire altri interventi farmacologici utilizzando sequenze del recettore utilizzabili per la localizzazione del farmaco.

a) Il farmaco è sviluppato per un recettore centrale per modulare un altro recettore centrale a livello del sito di riconoscimento. Un esempio è di avere un antagonista A2A che agisce sul recettore centrale A2A nei complessi dei recettori eterodimerici antagonisti A2A/D2 a produrre il miglioramento del segnale del recettore D2. Tale farmaco potrebbe diventare un nuovo farmaco antiparkinsoniano con meno effetti collaterali. Il migliore approccio sarà di bloccare selettivamente la tasca di legame A2A nel complesso eterodimerico e non quei recettori A2A non collegati ai recettori D2.

b) Il farmaco è sviluppato per un recettore centrale per indirizzare l'agganciamento della proteina G e la selettività della proteina G di un altro recettore centrale o l'attività di un

recettore a canale ionico esistente nello stesso complesso eterodimerico. Un esempio è il complesso eterodimerico del recettore D5/GABA A dove l’attivazione del recettore D5 può ridurre la forza sinaptica del recettore GABA A. Tali farmaci potrebbero essere utilizzati nel trattamento dei disordini neuropsichiatrici.

c) Il farmaco è sviluppato per uno o entrambi i recettori centrali al controllo del traffico del recettore del complesso eterodimerico. Un esempio è il complesso eterodimerico A2A/D2 dove il trattamento prolungato combinato con gli agonisti dei recettori centrali per l’A2A e il D2 ha prodotto una forte internalizzazione e desensibilizzazione coinvolgendo anche il recettore D2. Questo farmaco darà una nuova conoscenza nel sviluppare bersagli per il trattamento di malattie neuropsichiatriche.

BIBLIOGRAFIA

1 Ferre, S. et al. (2009) Building a new conceptual framework for reeeptor heteromers. Nat. Chem. Biol. 5, 131-134

2 AbdAlla, S. et al. (2000) AT1-receptor heterodimers show enhanced G protein activation and altered receptor sequestration. Nature 407, 94- 98

3 Gomes, I. et al. (2000) Heterodimerization of mu and delta opioid receptors: A role in opiate synergy. J. Neurosci. 20, RC110

4 Jordan, B.A. e Devi, L.A. (1999) G-protein-coupled receptor heterodimerization modulates receptor function. Nature 399, 697-700

5 Rocheville, M. et al. (2000) Receptors for dopamine and somatostatin: formation of hetero- oligomers with enhanced functional activity. Science 288, 154-157

6 George, S.R. et al. (2000) Oligomerization of mu- and delta-opioid receptors. Generation of novel functional properties. J. Biol. Chem. 275, 26128-26135

7 Pfeiffer, M. et al. (2001) Homo- and heterodimerization of somatostatin receptor subtypes. Inactivation of sst(3) receptor function by heterodirnerization with sst(2A). J. Biol. Chem. 276, 14027-14036

8 Zhu, W.Z. et al. (2005) Heterodimerization of beta1- and beta2- adrenergic receptor subtypes optimizes beta-adrenergic modulation of cardiac contractility. Circ. Res. 97,244-251

9 Rozenfeld, R. et al. (2006) Heterodimers of G protein-coupled receptors as novel and distinct drug targets. Drug Disov. Today: Ther. Strat. 3, 437-443

10 Jordan, B.A. et al. (2003) Functional interactions between mu opioid and alpha 2A- adrenergic receptors. Mol. Pharmacol. 64, 1317-1324

11 Vilardaga, J.P. et al. (2008) Conformational cross-talk between alpha2A-adrenergic and mu- opioid receptors controls cell signaling. Nat. Chem. Biol. 4, 126-131

12 Breit, A. et al. (2006) Simultaneous activation of the delta opioid receptor (deltaOR)/sensory neuron-specific receptor-4 (SNSR-4) hetero-oligomer by the mixed bivalent agonist bovine adrenal medulla peptide 22 activates SNSR-4 but inhibits deItaOR signaling. Mol. Pharmacol. 70, 686-696

13 Rashid, A.J. et al. (2007) D1-D2 dopamine receptor hetero-oligorners with unique pharmacology are coupled to rapid activation of Gq/11 in the striatum. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 104, 654-659

14 So, C.H.et al. (2007) Desensitization of the dopamine D1 and D2 receptor hetero-oligomer mediated calcium signal by agonist occupancy of either receptor. Mol. Pharmacol.72, 450-462 15 Fan, T. et al. (2005) A role for the distaI carboxyl tails in generating the noveI pharmacology and G protein activation profìle of mu and delta opioid receptor hetero-oligomers. J. Biol. Chem. 280,38478—38488

16 Small, KM. et al. (2006) Alpha2A and alpha2C adrenergic receptors form homo and heterodimers: the heterodimeric state impairs agonist-promoted GRK phosphorylation and beta-arrestin recruitmenl. Biochemistry 45, 4760-4767

17 Rozenfeld, R. e Devi, L.A. (2007) Receptor heterodimerization leads to a switch in signaling: beta-arrestin2-mediated ERK activation by mu-delta opioid receptor heterodimers. FASEB J. 21, 2455-2465

18 Agnati LF, Fuxe K, Zini I, Lenzi P, and Hokfelt T (1980) Aspects on receptor regulation and isoreceptor identification. Med Biol (Helsinki) 58:182-187

19 Agnati LF, Celani MF, and Fuxe K (1983b) Cholecystokinin peptides in vitro modulate the characteristics of striatal [3H] N-propylnorapomorphine binding sites. Acta Physiol Scand 118:79-81.

20 Zoli M, Agnati LF, Hedlund PB, Li XM, Ferré S, and Fuxe K (1993) Receptor/receptor interactions as an integrative mechanism in nerve cells. Mol Neurobiol 7:293-334.

21 Hollenberg MD (]991l Structure-activity relationship for transmembrane signalling: the receptor's turn FASEB J 5:178-186.

22 Schlessinger J (1988) Signal transduction by allosteric reeeptor oligomerization. Trends Biochem Sci 13:443-447.

23 Schlessinger J (2000) Celi signaling by receptor tyrosine kinases. Cell 103:211-225.

24 Helldin CH (1995) Dimerization of cell surface receptors in signal transduction. Cell 80:213- 223.

25 Margeta-Mitrovic M, Jan YN, and Jan LY (2000) A trafficking checkpoint controls GABAB receptor heterodimerization. Neuron 27:97-106.

26 Agnati LF, Fuxe K, Zoli M, Rondanini C, and Ogren SO (1982) New vistas on synaptic pasticity: mosaic hypothesis on the engram. Med Biol 60:183-190.

27 Zoli M, Agnati LF, Hedlund PB, Li XM, Ferré S, and Fuxe K (1993) Receptor/receptor interactions as an integrative mechanism in nerve cells. Mol Neurobiol 7:293-334.

28 Agnati LF and Fuxe K (2000) Volume transrnission as a key fcature of information handling in the central nervous system. Possible new interpretative value of the Turing's B-type machine. Prog Brain Res 125:3-19.

29 Kaupmann K, Malitschek B, Schuler V, Heid J, Froesti W, Beck P, Mosbacher J, Bischoff S, Kulik A, Shigemoto R, et al. (1998) GABAB-receptor subtypes assemble into functional heteromeric complexes. Nature (Lond) 396:683-687.

30 Jones KA. Borowsky B, Tamm JA, Craig DA, Durkin MM, Dai M, Yao WJ, Johnson M, Gunwaldsen C, Huang LY, et al. (1998) GABAB receptors function as a heterorneric assembly of the subunits GABABR1 and GABABR2. Nature (Lond) 396:674-682.

31 White JH, Wise A, Main MJ, Green A, Fraser NJ, Disney GH, Barnes AA, Emson P, Foord SM, and Marshall FH (1998) Heterodimerization is required for the formation of a functional GABA(B) receptor. Nature (Lond) 396:679-682.

32 Kuner R, Kohr G, GrUnewald S, Eisenhardt G, Bach A, and Kornau HC (1999) Role of heteromer formation in GABAB receptor function. Science (Wash DC) 283:74-77.

33 Ng GY, Clark J, Coulombe N, Ethier N, Hebert TE, Sullivan R, Kargman S, Chateauneuf A, Tsukamoto N, McDonald T, et al. (1999) Identification of a GABAB receptor subunit, gb2, required for functional GABAB receptor activity. J Biol Chem 274:7607-7610.

34 Gordon YK, Clark J, Coulombe N, Ethier N, Herbert TE, Sullivan R, Kargman S, Chateauneuf A, Tsukamoto N, McDonald T, et al. (1999) Identification of a GABAB receptor subunit, gb2, required for functional GABAB receptor activity. J Biol Chem 274:7607-7610.

35 Mitrovic MM, Nung Jan Y, and Yeh Jan L (2000) A trafficking checkpoint controls GABAB receptor heterodimerization. Neuron 27:97-106.

36 Alger BE and Nicoll RA (1979) GABA mediated biphasic inhibitory responses in hippocampus. Nature (Lond) 281:315-317.

37 Bettler B, Kaupmann K, and Bowery NG (1998) GABAB receptors: drugs meet clones. Curr Opin Neurobiol 8:345-350.

38 Kammerer RA, Frank S, Schulthess T, Landwehr R, Lustig A, and Engel J (1999) Heteromerization of a functional GABAB receptor is mediated by parallel coiled-coil α helices. Biochemistry 38:13263-13269.

39 Fuxe K and Agnati LF (1985) Receptor/receptor interactions in the centraI nervous system. A new integrative mechanism in synapses. Med Res Reu 5:441-482.

40 Fuxe K and Agnati L (1987) Reeeptor / receptor Interactions. A New Intramembrane Integrative Mechanism, Macmillan, London.

41 Ng GY, Bertrand S, Sullivan R, Ethier N, Wang J, Yergey J, Belley M, Trimble L, Bateman K, Alder L, et al. (2001) Gamma-aminobutyric acid type B receptors with specific heterodimer composition and postsynaptic actions in hippocampal neurons are targets of anticonvulsant gabapentin action. Mol Pharmacol 59:144-152.

42 Gamier M, Zaratin PF, Ficalora G, Valente M, Fontanella l, Rhee MH, Blumer KJ, Scheideler MA (2003) Up-regulation of regulator of G protein signaling 4 expression in a model of neuropathic pain and insensitivity to morphine. J Pharmacol Exp Ther 304(3):1299-1306.

43 Gaveriaux-Ruff C, Kieffer BL (2002) Opioid receptor genes inactivated in mice: The highlights. Neuropeptides 36(2-3):62-71.

44 Cahill CM, Morinville A, Hoffert C, O'Oonneli D, Beaudet A: Upregulation and trafficking of δ

opioid receptor in a model of chronic inflammation (2003) Implications for pain control. Pain 101(1-2):199-208.

45 Bao l, Jin SX, Zhang C, Wang lH, Xu ZZ, Zhang FX, Wang lC, Ning FS, Cai HJ, Guan JS, Xiao HS et al (2003) Activation of δ opioid receptors induces receptor insertion and neuropeptide secretion. Neuron 37(1):121-133.

46 Kieffer BL (1999) Opioids: first lessons from knockout mice, TIPS 20:19-26.

47 Levac BA, O'Dowd BF, and George SR (2002) Oligomerization of opioid receptors: generation of novel signaling units. Curr Opin. Pharmacol 2:76-8l.

48 Howlett AC (2002) The cannabinoid receptors. Prostaglandins Other Lipid Mediat 68-69:619- 631.

49 Malan TP Jr, Ibrahim MM, lai J, Vanderah TW, Makriyannis A, Porreca F (2003) CB2 cannabinoid receptor agonists: Pain relief without psychoactive effects? Curr Opin Pharmacol 3(1):62-67.

50 Zhang J, Hoffert C, Vu H-K, Groblewski T, Ahmad S, O'Oonneli D (2003) Induction of CB2 receptor expression in the rat spinal cord of neuropathic but not inflammatory chronic pain models. Eur J Neurosci 17(12):2750-2754.

51 Lembo PMC, Grazzini E, Groblewski T, O'Oonneli D, Roy M-O, Zhang J, Hoffert C, Cao J, Schmidt R, Pelletier M, labarre M (2002) Proenkephalin A gene products activate a new family of sensory neuron-specific GPCRs. Nat Neurosci 5(3):201-209.

52 Dong X, Han S, Zylka MJ, Simon MI, Anderson D (2001) A diverse family of GPCRs expressed in specific subsets of nociceptive sensory neurons. Cell 106(5):619-632.

53 Han S-K, Oong X, Hwang J-I, Zylka MJ, Anderson DJ, Simon MI (2002) Orphan G protein- coupled receptors MrgA1 and MrgC11 are distinctively activated by RF-amide-related peptides through the Gmq/11 pathway. Proc Natl Acad Sci USA 99(23):14740-14745.

54 Bender E, Buist A, Jurzak M, langlois X, Baggerman G, Verhasselt P, Erken M, Guo HO, Wintmolders C, Van den Wyngaert l, Van Oers I et al (2002) Characterization of an orphan G protein-coupled receptor localized in the dorsal root ganglia reveals adenine as a signaling molecule. Proc Natl Acad Sci USA 99(13):8573-8578.

55 Yu XH, Cao CO, Mennicken F, Puma C, Oray A, O'Oonneli D, Ahmad S, Perkins M (2003) Pro- nociceptive effects of neuromedin U in rat, Neuroscience 120(2):467-474.

56 Xu XJ, Hokfelt T, Bartfai T, Wiesenfeld-Hallin Z (2000) Galanin and spinal nociceptive mechanisms: Recent advances and therapeutic implications. Neuropeplides 34(3-4):137-147. 57 Ji RR, Zhang O, Bedecs K, Arvidsson J, Zhang X, Xu XJ, Wiesenfeld- Hallin Z, Bartfai T, Hokfelt T (1994) Galanin antisense oligonucleotides reduce galanin levels in dorsal root ganglia and induce autotomy in rats after axotomy. Proc Natl Acad Sci USA 91(26):12540-

12543.

58 Blakeman KH, Hao JX, Xu XJ, Jacoby AS, Shine J, Crawley JN, lismaa T, Wiesenfeld-Hallin Z (2003) Hyperalgesia and increased neuropathic pain-like response in mice lacking galanin receptor 1 receptors. Neuroscience 117(1):221-227.

59 Usdin TB, Oobolyi A, Ueda H, Palkovits M (2003) Emerging functions for tuberoinfundibular peptide of 39 residues. Trends Endocrinol Melab 14(1):14-19.

60 Dobolyi A, Ueda H, Uchida H, Palkovits M, Usdin TB (2002) Anatomical and physiological evidence for involvement of tuberoinfundibular peptide of 39 residues in nociception. Proc Natl Acad Sci USA 99(3):1651-1656.

61 Ferré S, von Euler G, Johansson B, Fredholm BB, and Fuxe K (1991d) Stimulation of high- affinity adenosine A-2 receptors decreases the affinity of dopamine D-2 receptors in rat striatal membranes. Proc Natl Acad Sci USA 88:7238-7241.

62 Ferré S and Fuxe K (1992) Dopamine denervation leads to an increase in the membrane interaction between adenosine A2 and doparnine D2 receptors in the neostriatum. Brain Res 594:124-130.

63 Ferré S, Fredholm BB, Morelli M, Popoli P, and Fuxe K (1997) Adenosine-dopamine receptor/receptor interactions as an integrative mechanism in the basal ganglia. Trends Neurosci 20:482-487.

64 Fuxe K, Ferré S, Snaprud P, von Euler G, Johansson B, and Fredholm B (1993) Antagonistic A2A/D2 receptor interactions in the striatum as a basis for adenosinel dopamine interactions in the central nervous system. Drug Dev Res 28:374-380.

65 Fuxe K, Ferré S, Zoli M, and Agnati LF (1998) Integrated events in central dopamine transmission as analyzed at multiple levels. Evidence for intramernbrane adenosine A2A/dopamine D2 and adenosine A1/dopamine D1 receptor interactions in the basaI ganglia. Brain Res Reu 26:258-273.

66 Lepiku M, Rinken A, Jarv J, and Fuxe K (1997) Modulation of [3H]quinpirole binding to dopaminergic receptors by adenosine A2A receptors. Neurosci Lett 239:61-64.

67 Hillion J, Canals M, Torvinen M, Casado V, Scott R, Terasmaa A, Hansson A, Watson S, Olah ME, Mallol J, et al. (2002) Coaggregation, cointernalization and codesensitization of adenosine A2A receptors and dopamine D2 receptors. J Biol Chem 277:18091-18097.

68 Salim H, Ferré S, Dalal A, Peterfreund RA, Fuxe K, Vincent JD, and Lledo PM (2000) Activation of adenosine Al and A2A receptors modulates dopamine D2 receptorinduced responses in stably transfected human neuroblasloma cells. J Neurochem 74:432-439.

69 Kull B, Fer-ra S, Arslan G, Svenningsson P, Fuxe K, Owman C, and Fredholm BB (1999) Reciprocal interactions between adenosine A2A and dopamine D2 receptors in Chinese harnster ovary cclls co-transfectcd with the two receptors, Biochem: Pharmacol 158:1035-1045.

70 Kozell LB, Machida CA, Neve RL, and Neve KA (]994) Chimeric D1/D2 dopamine receptors. Distinct determinants of selective efficacy, potency and signal transducticn. J Biol Chem. 269:30299-30306.

71 Kozell LB and Neve KA (1997) Constitutive activity of a chimeric D2/D1 dopamine receptor. Mol Pharmacol 52:1137-1149

72 Zeng EV, Pearce RK, MacKenzie GM, and Jenner P (2000) Alterations in preproenkephalin and adenosine-2a receptor mRNA, but not preprotachykinin mRNA correlate with occurence of dyskinesia in normal monkeys chronically treated with L-DOPA. Eur J Neurosci 12:1096-1104 73 Torvinen M, Liu Y, Kozell LB, Neve KA, Ferré S, Ibanez C, and Fuxe K (2001) Dopamine D2 receptor domains involved in the intramembrane interaction between adenosine A2A and dopamine D2 receptors. Soc Neurosci Abstr 27:379.3

74 Garrett BE and Holtzman SG (1994) Caffeine cross-tolerance to selective dopamine D1 and D2 receptor agonists but not to their synergistic interaction. Eur J Pharmacol 262:65-75.

75 Fenu S, Cauli O, and Morelli M (2000) Cross-sensitization between the motor activating effects of bromocriptine and caffeine: role of adenosine A2A receptors. Behav Brain Res 114:97- 105.

76 Hillion, L, Canals, M., Torvinen, M., Casa do, V., Scott, R., Terasmaa, A., Hansson, A., Watson, S., Olah, M. E., Mallol, J., Canela, E. I., Zoli, M., Agnati, L. F., Ibanez.C. F., Lluis, C, Franco, R., Ferre, S., and Fuxe, K. (2002) J. Biol. Chem. 277, 18091-18097

77 Ferre, S., von Euler, G., Johansson, B., Fredholm, B. B., and Fuxe, K. (1991) Proc. Natl. Acad. Sci. U.5.A. 88,7238-7241

78 Ferré, S., Fredholm, B. B., Morelli, M., Popoli, P., and Fuxe, K. (1997) Trends Neurosci. 20, 482-487

79 Ferré, S., Ciruela, F., Quiroz, C, Lujàn, R., Popoli, P., Cunha, R.A., Agnati, L. F., Fuxe, K., Woods, A. S., Lluis, C, and Franco, R. (2007) Scientific WorldJournal 7, 74- 85

80 Ferré, S., Quiroz, c., Woods, A. S., Cunha, R., Popoli, P., Ciruela, F., Lluis, c., Franco, R., Azdad, K., and Schiffmann, S. N. (2008) Curr. Pharm. Des. 14,1468-1474

81 Canals, M., Marcellino, D., Fanelli, F., Ciruela, F., de Benedetti, P., Goldberg, S. R., Neve, K., Fuxe, K., Agnati, L. F., Woods, A. S., Ferré, S., Lluis, C, Bouvier, M., and Franco, R. (2003) J. Biol. Chem. 278, 46741-46749

82 Altamura, A. C, Bassetti, R., Cattaneo, E., and Vismara, S. (2005) World J. Biol. Psychiatry 6, Suppl. 2, 23-30

83 Ciruela, F., Burgueno, L, Casadò, V., Canals, M., Marcellino, D., Goldberg, S. R., Bader, M., Fuxe, K., Agnati, L. F., Lluis, c, Franco, R., Ferré, S., and Woods, A. S. (2004) Anal. Chem. 76, 5354- 5363

84 Woods, A. S., and Ferré, S. (2005) J. Proteome Res. 4, 1397-1402

85 Woods, A. S., Ciruela, F., Fuxe, K., Agnati, L. F., Lluis, c., Franco, R., and Ferré, S. (2005) J Mol. Neurosci. 26, 125-132

86 Bofill-Cardona, E., Kudlacek, O., Yang, Q., Ahorn, H., Frcissmuth, M., and Nanoff, C. (2000) J. Biol. Chem. 275, 32672-32680

87 Liu, Y., Buck, D. C, Macey, T. A., Lan, H., and Neve, K. A. (2007) J. Recept. Signal. Transduct. Res. 27,47-65

88 Woods, A. S., Marcellino, D., Iackson, S. N., Franco, R., Ferré, S., Agnati, L. F., and Fuxe, K. (2008) J. Proteome Res. 7,3428-3434

89 Woods, A. S. (2004) J. Proteome Res. 3,478-484

90 Woods, A. S., and Huestis, M. A. (2001) J. Am. Soc. Mass Spectrom. 12, 88-96

91 Nimchinsky EA, Hof PR, Janssen WC, Morrison JH, and Schmauss C (1997) Expression of dopamine D3 receptor dimers and tetramers in brain and in transfected cells. J Biol Chem 272:29229-29237.

92 Lee SP, Xie Z, Varghese G, Nguyen T, O'Dowd BF, and George SR (2000) Oligomerization of dopamine and serotonin receptors. Neuropsychopharmacology 23:S32-840.

93 Scarselli M, Novi F, Schallmach E, Lin R, Baragli A, Colzi A, Griffon N, Corsini GU, Sokoloff P, Levenson R, et al. (2001) D2/D3 dopamine receptor heterodimers exhibit unique functional properties. J Biol Chem 276:30308-30314.

94 Gouldson PR, Snell CR, Bywater RP, Higgs C, and Reynolds CA (1998) Domain swapping in G-

protein coupled receptor dimers, Protein Eng 11:1181-1193.

95 Gouldson PR, Higgs C, Smith RE, Dean MK, Gkoutos GV, and Reynolds CA (2000) Dimerization

and domain swapping in G-protein-coupled receptors: a computational study.

Neuropsychopbarmacology 23:60-77.

96 Maggio R, Vogel Z, and Wess J (1993) Coexpression studies with mutant muscarinid adrenergic receptors provide evidence for intermolecular 'cross-talk' between Gprotein- linked receptors. Proc Natl Acad Sci USA 90:3103-3107.

97 Le Moine C and Bloch B (1996) Expression of the D3 dopamine receptor in peptideric neurons of the nucleus accumbens: comparison with the D1 and D2 dopamine receptors. Neuroscience 73:131-143.

98 Gurevich EV and Joyce JN (999) Distribution of dopamine D3 receptor expressing neurons in

the human forebrain: comparison with D2 receptor expressing neurons.

Neuropeychophormacology 20:60-80.

99 Rocheville M, Lange DC, Kumar U, Sasi R, Patel RC, and Patel YC (2000b) Subtypes of the somatostatin receptor assemble as functional home- and heterodimers. J Biol Chem 275:7862- 7869.

100 Cohn ML and Cohn M (1975) "Barrel rotation" induced by somatostatin in the nonlesioned rat. Brain Res 96:138

101 Havlicek V, Rezek M, and Friesen H (1976) Somatostatin and thyrotropin releasing hormone: centraI effect on sleep and motor system. Pharmacol Biochem Behav 4:455-459. 102 Kastin AJ, Coy DH, Jacquet Y, Schally AV, and PlotnikoffNP (1978) CNS effects of somatostatin. Metabolism 27:1247-1252.

103 Chneiweiss J, Glowinski J, and Premont J (1985) Modulation by monoamines of somatostatin-sensitive adenylate cyclase on neuronal and glial cells from the mouse brain in primary cultures. Neurochemistry 44:1825.

104 Ginés S, Hillion J, Torvinen M, LeCrom S, Casado V, Canela E, Rondin S, Lew J, Watson S, Zoli M, et al. (2000) Dopamine D1 and adenosine A1 receptors assemble into functionally interacting heteromeric complexes. Proc Natl Acad Sci USA 97:8606-8611.

105 Martin-Iverson MT, Radke JM, and Vincent SR (1986) The effects of cysteamine on dopamine-mediated behaviors: evidence for dopamine-somatostatin interactions in the

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