• Non ci sono risultati.

H2S rappresenta un mediatore importante a livello cardiovascolare; esso è, infatti, ampiamente descritto in letteratura come uno degli attori principali dei processi cardioprotettivi endogeni. Conseguentemente, agenti in grado di rilasciarlo possono risultare potenziali farmaci per il trattamento di alterazioni associabili ad una patologia legata ad ischemia miocardica.

Il lavoro di tesi intrapreso è stato dunque finalizzato ad una valutazione di una possibile azione protettiva di H2S esogeno in un modello sperimentale di cardiomioblasti di ratto H9c2.

La somministrazione di NaHS (“donatore” rapido di H2S) alle concentrazioni di 10µM e 30µM non ha prodotto effetti protettivi sui cardiomioblasti dal successivo insulto da A/R. Viceversa, la concentrazione di 100µM ha portato ad una pressoché totale preservazione delle cellule H9c2 da tale insulto.

71 | VE ICO LO O2 VE ICO LO N2 µµµµM NaH S 1 00 M µµµµ NaH S 3 0 µµµµM NaH S 1 0 0 50 100 150 V it a li c e ll u la re %

Grafico 1: Effetti sulla vitalità cellulare di diverse concentrazioni di NaHS.

La evidente mancanza di correlazione tra concentrazione e risposta, peraltro già osservata in altri modelli sperimentali non relativi a questa tesi, potrebbe essere spiegata mediante diverse ipotesi:

• Una prima spiegazione potrebbe essere riconducibile alle proprietà di H2S donor di NaHS stesso. Tale sostanza è infatti ampiamente utilizzata in letteratura in questa ottica. Tuttavia è improprio considerarla un H2S-donors in quanto HS- è una forma dissociata di H2S e la formazione della specie indissociata è pressoché istantanea una volta in soluzione; essa è infatti legata ad un processo di protonazione ed è dunque strettamente correlata a pH e temperatura. • Una seconda ipotesi potrebbe, invece, essere correlata con un aspetto

farmacodinamico. È infatti possibile che la modalità di azione farmacologica di H2S veda la presenza di una soglia del tipo “tutto o nulla” per cui al superamento di tale soglia si osserva già un effetto massimale mentre al di sotto della stessa non si evidenzia alcuna azione della sostanza.

72 | Lo studio è stato poi esteso ad altri donatori di H2S che possono più propriamente essere definiti come tali in quanto presentano una cinetica di rilascio più lenta, controllata nel tempo. Tra questi una delle molecole di riferimento è il DADS. Esso è un polisolfuro allilico che si forma a partire dall’aglio e che, in presenza di gruppi tiolici, è in grado di rilasciare H2S (Benavides et al. 2007). VEI CO LO O2 VE ICO LO N2 DA DS 1m M µµµµM DA DS 100 M µµµµ DA DS 10 0 50 100 V it a li c e ll u la re %

Grafico 2: Effetti delle concentrazioni di DADS sulla vitalità cellulare.

Le concentrazioni 10µM e 100µM non hanno prodotto alcun effetto protettivo sui cardiomioblasti esposti all’insulto da A/R. La concentrazione massima testata, 1mM, ha addirittura apportato un decremento della vitalità (che comunque non raggiunge i limiti di significatività statistica). Tale effetto potrebbe essere spiegato con il manifestarsi di possibili effetti citotossici, improbabilmente correlati a H2S (infatti anche la concentrazione di DADS 1mM libera un quantitativo di H2S nell’ordine del basso micro molare), ma piuttosto sono imputabili, probabilmente, ad un meccanismo d’azione H2S-indipendente. In effetti, la

73 | presenza di meccanismi farmacodinamici del DADS indipendenti da H2S è stato osservata anche in altri modelli sperimentali.

La valutazione dell’attività protettiva è stata quindi estesa a molecole di nuova sintesi, disegnate e progettate come H2S-donors con lenta cinetica di rilascio: IS-176, SM24, SM30 e SM39. VE ICO LO O2 VEIC OLO N2 IS-1 76 1 mM µµµµM IS-1 76 1 00 M µµµµ SM 24 1 0 0 50 100 V it a li c e ll u la re % VE ICO LO O2 VEIC OLO N2 SM 30 1 mM µµµµM SM 30 1 00 M µµµµ SM 30 1 0 µµµµM SM 39 1 0 0 50 100 V it a li c e ll u la re %

Grafici 3 e 4: Effetti sulla vitalità cellulare delle sostanze di nuova sintesi a diverse concentrazioni.

74 | Nessuna di queste molecole ha prodotto una significativa attività protettiva, sebbene in certi casi si possa osservare una certa tendenza all’incremento di vitalità cellulare. Tale risultato sembra suggerire che, al fine di conferire ai miocardiociti una protezione nei confronti del danno da A/R, sia preferibile agli H2S donors “lenti” un agente farmacologico in grado di fornire rapidamente e massivamente H2S, come NaHS.

Per quanto riguarda i dati protettivi esercitati da NaHS, essi forniscono una importante indicazione meccanicistica. Esistono infatti convincenti evidenze sperimentali che testimoniano gli effetti anti ischemici di H2S in diversi modelli sperimentali di A/R, condotti in vivo (ad esempio ischemia acuta miocardica mediante legatura coronarica) e su organo isolato (ad esempio cuore perfuso con metodica Langendorff, sottoposti a cicli di ischemia/riperfusione). È importante tuttavia notare che, in tali metodi sperimentali, gli effetti protettivi possono risultare dalla concomitanza di effetti esercitati da H2S a più livelli, e quindi anche a livello extracardiaco. Ad esempio, i noti effetti vascolari diretti di H2S, e la sua capacità di innescare e/o potenziare meccanismi nitrergici correlati alla liberazione di NO endoteliale possono chiaramente contribuire alla promozione di effetti cardioprotettivi. Il riscontro di effetti protettivi sul modello cellulare utilizzato in questo lavoro sperimentale ovviamente non esclude la pur probabile presenza di meccanismi extracardiaci, ma dimostra inequivocabilmente che l’azione protettiva di H2S deve fondarsi anche su meccanismi d’azione che transitano attraverso target molecolari intrinseci a livello del cardiomiocita.

Pertanto, gli effetti protettivi osservati per NaHS sono stati oggetto di ulteriore indagine farmacodinamica, finalizzata alla identificazione del target molecolare responsabile dell’effetto.

Il bloccante selettivo dei canali mito-KATP, 5-HD, ha ridotto in modo modestissimo e non significativo gli effetti protettivi di NaHS. Pertanto, il ruolo di attivatore di tali canali diffusamente attribuito a H2S non è

75 | responsabile (o non è il solo responsabile) dell’azione protettiva, che deve essere quindi ricondotta ad altre cause.

Recenti acquisizioni sperimentali emerse nel nostro laboratorio, hanno permesso di dimostrare che H2S agisce come attivatore di una classe di canali del potassio di fondamentale importanza nel mantenimento dell’omeostasi cardiocircolatoria: i canali voltaggio operati Kv7 (Martelli et al. 2011b). Alla luce di tale dato, la valutazione del possibile coinvolgimento di tali canali nell’azione di H2S sulle cellule H9c2 è stata valutata mediante l’impiego di bloccanti specifici:

• XE-991; • Linopirdina.

La somministrazione di XE-991, analogamente da quanto mostrato da 5-HD, ha causato una trascurabile e non significativa riduzione degli effetti di H2S. Invece, Linopirdina ha mostrato un profilo assolutamente imprevedibile, portando ad un modesto potenziamento dell’azione di NaHS, probabilmente riconducibile a meccanismi ancillari, indipendenti dalla sua azione bloccante dei Kv7..

Trascurabile è stato anche l’effetto di E-4031, un bloccante di un altro tipo di importanti canali del potassio cardiaci, i canali hERG, indicando dunque una estraneità di questi canali.

La co-somministrazione di 5-HD/XE-991 ha portato, invece, ad una più marcata riduzione degli effetti protettivi di NaHS. Tale dato suggerisce pertanto che la azione protettiva di NaHS stesso sul danno da A/R nei cardiomioblasti di H9c2 sia probabilmente da attribuire ad una concomitante influenza legata all’attivazione sia di canali KATP espressi a livello mitocondriale, che di canali Kv7, la cui collocazione è tutt’ora oggetto di studio.

76 |

Grafico 5: Effetti sulla vitalità cellulare della somministrazione di NaHS e bloccanti di vari tipi di canali del potassio.

VEIC OLO O2 VEIC OLO N2 µµµµM NaH S 1 00 M µµµµ M+5 -HD 100 µµµµ NaH S 1 00 M µµµµ M+X E-9 91 1 0 µµµµ NaH S 1 00 M µµµµ M+L INO PIR DIN A 1 0 µµµµ NaH S 1 00 M µµµµ M+E -403 1 10 µµµµ NaH S 1 00 M µµµµ M+X E99 1 10 µµµµ M+5 -HD 100 µµµµ NaH S10 0 0 50 100 150 V it a li C e ll u la re %

77 |

BIBLIOGRAFIA

Abe K, Kimura H. The possible role of hydrogen sulfide as an endogenous neuromodulator. J Neurosci 1996;16:1066–1071.

Ali MY, Ping CY, Mok YY, Ling L, Whiteman M, Bhatia M, Moore PK. Regulation of vascular nitric oxide in vitro and in vivo; a new role for endogenous hydrogen sulphide? Br J Pharmacol 2006;149:625–634.

Allen DG, Orchard CH. Myocardial contractile function during ischemia and hypoxia. Circulation Research 1987, 60:153-168.

Amino M, Yoshioka K, Suzuki Y, Uemura S, Sakurai K, Fukushima T, Morita S, Otsuka H, Nakagawa Y, Yamamoto I, Kodama I, Inokuchi S, Tanabe T. Improvement in a patient suffering from cardiac injury due to severe hydrogen sulfide poisoning: A long-term examination of the process of recovery of heart failure by performing nuclear medicine study. Inter Med 2009;48:1745–1748.

Baumgart K, Radermacher P, Wagner F. Applying gases for microcirculatory and cellular oxygenation in sepsis: Effect of nitric oxide, carbon monoxide and hydrogen sulphide. Curr Opin Anaesthesiol 2009;22:168–176.

Beltowski J, Jamroz A, Borkowska E, Heme oxidase and carbon monoxide in cardiovascular physiology and pathology. Postepy Hig Med Dosw (On-line)

78 |

Bian JS, Yong QC, Pan TT, Feng ZN, Ali MY, Zhou S, Moore PK. Role of hydrogen sulfide in the cardioprotection caused by ischemic preconditioning in the rat heart and cardiac myocytes. J Pharmacol Exp Ther 2006;316:670–678.

Bolli R. Cardioprotective function of inducible nitric oxide synthase and role of nitric oxide in myocardial ischemia and preconditioning: an overview of a decade of research. J Mol Cell Cardiol. 2001 Nov;33(11):1897-918.

Brancaleone V, Roviezzo F, Vellecco V, De Gruttola L, Bucci M, Cirino G. Biosynthesis of H2S is impaired in non-obese diabetic (NOD) mice. Br J Pharmacol 2008;155:673–680.

Bredt DS, Snyder SH, Isolation of nitric oxide synthetase, a calmodulin requiring enzyme. Proc Natl Acad Sci USA 1990; 87: 682-685.

Bryan J, Vila-Carriles WH, Zhao J, Babenko AP, Aguilar-Bryan L. Toward linking structure with function in ATP-sensitive K1 channels. Diabetes

2004;53:S104–S112.

Bugge E, Ytrehus K. Inhibition of sodium-hydrogen exchange reduces infarct size in the isolated rat heart--a protective additive to ischaemic preconditioning. Cardiovasc Res. 1995 Feb;29(2):269-74.

Buja LM, Hagler HK, Willerson JT. Altered calcium homeostasis in the psthogenesis of myocardial ischemic and hypoxic injury. Cell Calcium 1988, 9(5-6): 205-17.

Buja LM. Myocardial ischemia and reperfusion injury. Cardiovasc Pathol.

79 |

Calabrese V, Mancuso C, Calvani M, Rizzarelli E, Butterfield DA, Stella AM. Nitric oxide in the central nervous system: Neuroprotection versus neurotoxicity. Nat Rev Neurosci 2007;8:766–775.

Calderone V, Testai L, Martelli A, Rapposelli S, Digiacomo M, Balsamo A, Breschi MC. Anti-ischemic properties of a new spiro-cyclic benzopyran activator of the cardiac mito-K(ATP) channel. Biochemical Pharmacology, vol 70 pp 39-47, 2010.

Cavallini D, Modovi B, De Marco C, Sciosciasantoro A. Inhibitory effect of mercaptoethanol and hypotaurine on the desulfhydration of cysteine by cystathionase. Arch Biochem Biophys 1962;96: 456–457.

Chang L, Geng B, Yu F, Zhao J, Jian H, Du J, Tang C. Hydrogen sulfide inhibits myocardial injury induced by homocysteine in rats. Amino acids 2008;34:573– 585.

Chen S-L, Yang C-T, Yang Z-L, Guo R-X, Meng J-L, Cui Y, Lan A-P, Chen P-X, Feng J-Q. Hydrogen sulphide protects H9c2 cells against chemical hypoxia- induced cell injuries. Clin Exp Pharmacol Physiol; in press, DOI: 10.1111/j.1440-1681.2009.05289.x.

Chen X, Jhee KH, Kruger WD. Production of the neuromodulator H2S by cystathionine beta-synthase via the condensation of cystein and homocysteine. J Biol Chem 2004;279:52082–52086.

Chen Y-H, Wu R, Geng B, Qi Y-F, Wang P-P, Yao W-Z, Tang C-S. Endogenous hydrogen sulphide reduces airway inflammation and remodelling in a rat model of asthma. Cytokine 2009;45:117–123.

80 |

Cheng Y, Ndisang JF, Tang G, Cao K, Wang R. Hydrogen sulfide-induced relaxation of resistance mesenteric artery beds of rats. Am J Physiol Heart Circ Physiol 2004;287: H2316–H2323.

Collard CD, Gelman S. Pathophysiology, clinical manifestation, and prevention of ischemia-reperfusion injury. Anesthesiology 2001, 94: 1133-8.

Doeller JE, Isbell TS, Benavides G, Koenitzer J, Patel H, Patel RP, Lancaster JR, Jr, Darley-Usmar VM, Kraus DW. Polarographic measurement of hydrogen sulfide production and consumption by mammalian tissues. Anal Biochem

2005;341:40–51.

Dombkowski RA, Russel MJ, Olson KR. Hydrogen sulfide as an endogenous regulator of vascular smooth muscle tone in trout. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol 2004;286: R678–R685.

Dominy JE, Stipanuk MH. New roles for cysteine and transsulfuration enzymes: Production of H2S, a neuromodulator and smooth muscle relaxant. Nutr Rev

2004;62:348–353.

Dorman DC, Moulin FJ, McManus BE, Mahle KC, James RA, Struve MF. Cytochrome oxidase inhibition induced by acute hydrogen sulfide inhalation: Correlation with tissue sulphide concentration in the rat brain, liver, lung, and nasal epithelium. Toxicol Sci 2002;65:18–25.

Du J, Hui Y, Cheung Y, Bin G, Jiang H, Chen X, Tang C. The possible role of hydrogen sulfide as a smooth muscle cell proliferation inhibitor in rat cultured cells. Heart Vessels 2004;19:75–80.

Eto K, Kimura H. A novel enhancing mechanism for hydrogen sulfide-producing activity of cystathionine beta-synthase. J Biol Chem 2002;277:42680–42685.

81 |

Farrugia G, Irons WA, Rae JL, Sarr MG, Szursewski JH, Activation of whole cell currents in isolated human jejunal circular smooth muscle cells by carbon monoxide. Am J Physiol 1993; 264:G1184-G1189.

Fiorucci S, Distrutti E, Cirino G, Wallace JL. The emerging roles of hydrogen

sulfide in the gastrointestinal tract and liver. Gastroenterology

2006;131:259–271.

Forgan LG, Forster ME. Oxygen consumption, ventilation frequency and cytochrome c oxidase activity in blue cod (Parapercis colias) exposed to hydrogen sulphide or isoeugenol. Comp Biochem Physiol 2010;151:57–65.

Furne J, Springfield J, Koenig T, DeMaster E, Levitt MD. Oxidation of hydrogen sulfide and methanethiol to thiosulfate by rat tissues: A specialized function of the colonic mucosa. Biochem Pharmacol 2001;62:255–259.

Geng B, Chang L, Pan C, Qi Y, Zhao J, Pang Y, Du J, Tang C. Endogenous hydrogen sulfide regulation of myocardial injury induced by isoproterenol. Biochem Biophys Res Commun 2004; 318:756–763.

Geng B, Yang J, Qi Y, Zhao J, Pang Y, Du J, Tang C. H2S generated by heart in rat and its effects on cardiac function. Biochem Biophys Res Commun

2004;313:362–368.

Goubern M, Andriamihaja M, Nubel T, Blachier F, Bouillaud F. Sulfide, the first inorganic substrate for human cells. FASEB J 2007;21:1699–1706.

Gross GJ, Auchampach JA. Blockade of ATP-sensitive potassium channels prevents myocardial preconditioning in dogs. Circ Res. 1992 Feb;70(2):223- 33.

82 |

Hansen JB, Arkhammar PO, Bodvarsdottir TB, Wahl P. Inhibition of insulin secretion as a new drug target in the treatment of metabolic disorders. Curr Med Chem 2004;11:1595–1615.

Herman ZS, Carbon monoxide: a novel neural messenger or putative involvement of nitric oxide in long term potentiation. Eur J Pharmacol 1991; 199:379-381.

Hildebrandt TM, Grieshaber MK. Three enzymatic activities catalyze the oxidation of sulfide to thiosulfate in mammalian and invertebrate mitochondria. FEBS J 2008;275:3352–3361.

Holmuhamedov EL, Jovanović S, Dzeja PP, Jovanović A, Terzic A. Mitochondrial ATP-sensitive K+ channels modulate cardiac mitochondrial function. Am J Physiol. 1998 Nov;275(5 Pt 2):H1567-76.

Holmuhamedov EL, Wang L, Terzic A. ATP-sensitive K+ channel openers prevent Ca2+ overload in rat cardiac mitochondria. J Physiol. 1999 Sep 1;519 Pt 2:347-60.

Hosoki R, Matsuki N, Kimura H. The possibile role of hydrogen sulfide as an endogenous smooth muscle relaxant in sinergy with nitric oxide. Biochem Biophys Res Commun 1997;237:527–531.

Hu LF, Wong PT, Moore PK, Bian JS. Hydrogen sulphide attenuates lipopolysaccharide-induced inflammation by inhibition of p38 mitogen- activated protein kinase in microglia. J Neurochem 2007;100:1121–1128.

Ishii I, Akahoshi N, Yu XN, Kobayashi Y, Namekata K, Komaki G, Kimura H. Murine cystathionine gamma-lyase: complete cDNA and genomic sequences, promoter activity, tissue distribution and developmental expression. Biochem J

83 |

Jeong SO, Pae HO, Oh GS, Jeong GS, Lee BS, Kim Du, Y, Rhew HY, Lee KM, Chung HT. Hydrogen sulfide potentiates interleukin-1beta-induced nitric oxide production via enhancement of extracellular signal-regulated kinase activation in rat vascular smooth muscle cells. Biochem Biophys Res Commun

2006;345:938–944.

Ji Y, Pang QF, Xu G, Wang L, Wang JK, Zeng YM. Exogenous hydrogen sulphide postconditioning protects isolated rat hearts against ischemia-reperfusion injury. Eur J Pharmacol 2008;587:1–7.

Jiang B, Tang G, Cao K, Wu L, Wang R. Molecular mechanism for H(2)S-induced activation of K(ATP) channels. Antiox Redox Signal 2010; in press. DOI: 10.1089/ars.2009.2894.

Johansen D, Ytrehus K, Baxter GF. Exogenous hydrogen sulfide (H2S) protects against regional myocardial ischemia-reperfusion injury—Evidence for a role of K ATP channels. Basic Res Cardiol 2006;101:53–60.

Kamoun P. Endogenous production of hydrogen sulfide in mammals. Amino Acids 2004; 26:243–254.

Kasparek MS, Linden DR, Kreis ME, Sarr MG. Gasotransmitters in the gastrointestinal tract. Surgery 2007;143:455–459.

Kimura H, Nagai Y, Umemura K, Kimura Y. Physiological roles of hydrogen sulfide: Synaptic modulation, neuroprotection, and smooth muscle relaxation. Antioxid Redox Signal 2005;7:795–803.

Kimura H. Hydrogen sulfide induces cyclic AMP and modulates the NMDA receptor. Biochem Biophys Res Commun 2000;267:129–133.

84 |

Kimura Y, Goto Y, Kimura H. Hydrogen sulfide increases glutathione production and suppresses oxidative stress in mitochondria. Antiox Redox Signal 2010;12:1–13.

Kiss L, Deitch EA, Szabo´ C. Hydrogen sulfide decreases adenosine triphosphate levels in aortic rings and leads to vasorelaxation via metabolic inhibition. Life Sci 2008;83:589–594.

Koenitzer JR, Isbell TS, Patel HD, Benavides GA, Dickinson DA, Darley-Usmar VM Lancaster JR, Jr, Doeller JE, Kraus DW. Hydrogen sulfide mediates vasoactivity in an O2-dependent manner. Am J Physiol Heart Circ Physiol

2007;292:H1953–H1960.

Kubo S, Doe I, Kurokawa Y, Kawabata A. Hydrogen sulphide causes relaxation in mouse bronchial smooth muscle. J Pharmacol Sci 2007;104:392–396.

Kuo SM, Lea TC, Stipanuk MH. Developmental pattern, tissue distribution, and subcellular distribution of cysteine: Alpha-ketoglutarate aminotransferase and 3-mercaptopyruvate sulfurtransferase activities in the rat. Biol Neonate

1983;43:23–32.

Kurzban GP, Chu L, Ebersole JL, Holt SC. Sulfhemoglobin formation in human erythrocytes by cystalysin, an L-cysteine desulfhydrase from Treponema denticola. Oral Microbiol Immunol 1999;14:153–164.

Kuzmin AI, Gourine AV, Molosh AI, Lakomkin VL, Vassort G. Effects of preconditioning on myocardial interstitial levels of ATP and its catabolites during regional ischemia and reperfusion in the rat. Res Cardiol. 2000 Apr;95(2):127-36.

85 |

Lee M, Schwab C, Yu S, McGeer E, McGeer P. Astrocytes produce the anti- inflammatory and neuroprotective agent hydrogen sulphide. Neurobiol Aging

2009;30:1523–1534.

Li L, Hsu A, Moore PK, Actions and interactions of nitric oxide,carbon monoxide and hydrogen sulphide in the cardiovascular and in inflammation a tale of three gases! Pharmacol Ther 2009 a; 123:386- 400.

Li L, Hsu A, Moore PK. Actions and interactions of nitric oxide, carbon monoxide and hydrogen sulphide in the cardiovascular system and in inflammation-a tale of three gases. Pharmacol Ther 2009;123:386–400.

Li L, Moore PK, Putative biological roles of hydrogen sulfide in health and disease: a breath of not so fresh air? Trends Pharmacol Sci 2008; 29(2):84-90.

Liu GS, Thornton J, Van Winkle DM, Stanley AW, Olsson RA, Downey JM. Protection against infarction afforded by preconditioning is mediated by A1 adenosine receptors in rabbit heart. Circulation. 1991;84(1):350-6.

Liu Y, Tsuchida A, Cohen MV, Downey JM. Pretreatment with angiotensin II activates protein kinase C and limits myocardial infarction in isolated rabbit hearts. J Mol Cell Cardiol. 1995 Mar;27(3):883-92.

Lochner A, Marais E, Genade S, Moolman JA. Nitric oxide: a trigger for classic preconditioning? Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2000 Dec;279(6):H2752- 65.

Lowicka E, Beltowski J, Hydrogen sulphide (H2S): the third gas of interest for pharmacologists. Pharmacol Rep 2007; 59:4-24.

86 |

Martelli A, Breschi MC, Calderone V. Pharmacodynamic Hibdrids Coupling Established Carsiovascular Mechanism of Action with Additional Nitric Oxide Releasing Properties. Current Pharmaceutical Designs 2009;15;614-636.

Martelli A, Rapposelli S, Calderone V. NO-releasing hybrids of cardiovascular drugs. Curr Med Chem 2006;13:609–625.

Martelli A, Testai L, Arcipreti A, Breschi MC, Calderone V. Involvement of Kv7 potassium channels in the effects of hydrogen sulphide on vascular smooth muscle. P-4/1, 35° Congresso Nazionale della Società Italiana di Farmacologia, Bologna 14-17 Settembre 2011.

Mei DA, Nithipatikom K, Lasley RD, Gross GJ. Myocardial preconditioning produced by ischemia, hypoxia, and a KATP channel opener: effects on interstitial adenosine in dogs. J Mol Cell Cardiol. 1998 Jun;30(6):1225-36.

Miki T, Seino S. Roles of KATP channels as metabolic sensors in acute metabolic changes. J Mol Cell Cardiol 2005;38:917–925.

Mishra PK, Tyagi N, Sen U, Givvimani S, Tyagi SC. H2S ameliorates oxidative and proteolytic stresses and protects the heart against adverse remodelling in chronic heart failure. Am J Physiol Heart Circ Physiol 2010;298:H451–H456.

Mitsuhashi H, Yamashita S, Ikeuchi H, Kuroiwa T, Kaneko Y, Hiromura K, Ueki K, Nojima Y. Oxidative stress-dependent conversion of hydrogen sulfide to sulfite by activated neutrophils. Shock 2005;24:529–534.

Moolman JA, Genade S, Tromp E, Lochner A. No evidence for mediation of ischemic preconditioning by alpha 1-adrenergic signal transduction pathway or protein kinase C in the isolated rat heart. Cardiovasc Drugs Ther. 1996 May;10(2):125-36.

87 |

Moore PK, Bathia M, Moochala S, Hydrogen sulphide: from the smell of the past to the mediator of the future? Trends Pharmacol Sci 2003; 24:609-611.

Mubagwa K, Flameng W. Adenosine, adenosine receptors and myocardial protection: an updated overview. Cardiovasc Res. 2001 Oct;52(1):25-39.

Murry, C.E., Jennings, R.B., Reimer, K.A. Preconditioning with ischemia: a delay of lethal cell injury in ischemic myocardium. Circulation.1986;74: 1124-36 neurotransmitter? Pol J Pharmacol 1997; 49:1-4.

Nicholls P, Kim, JK. Sulphide as an inhibitor and electron donor for the cytochrome c oxidase system. Can J Biochem 1982;60:613–623.

Nichols CG. KATP channels as molecular sensors of cellular metabolism. Nature

2006;440: 470–476.

Noma A. ATP-regulated K+ channels in cardiac muscle. Nature. 1983 Sep 8- 14;305(5930):147-8.

Oh GS, Pae HO, Lee BS, Kim BN, Kim JM, Kim HR, Jeon SB, Jeon WK, Chae HJ, Chung, H.T. Hydrogen sulfide inhibits nitric oxide production and nuclear factor-kappaB via heme oxygenase-1 expression in RAW264.7 macrophages stimulated with lipopolysaccharide. Free Radic Biol Med 2006;41:106–119.

Ohnuma Y, Miura T, Miki T, Tanno M, Kuno A, Tsuchida A, Shimamoto K. Opening of mitochondrial K(ATP) channel occurs downstream of PKC-epsilon activation in the mechanism of preconditioning. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2002 Jul;283(1):H440-7.

Olson KR, Donald JA, Nervous control of circulation the role of gasotransmitters, NO, CO and H2S. Acta Histochem 2009; 111:244 - 256.

88 |

Porter P, Grishaver MS, Jones OW. Characterization of human cystathionine beta-synthase: Evidence for the identity of human L-serine dehydratase and cystathionine beta-synthase. Biochim Biophys Acta 1974;364:128–139.

Pun PB, Lu J, Kan EM, Moochhala S. Gases in the mitochondria. Mitochondrion

2010;10:83–93.

Richard V, Kaeffer N, Tron C, Thuillez C. Ischemic preconditioning protects against coronary endothelial dysfunction induced by ischemia and reperfusion. Circulation. 1994; 89(3):1254-61.

Robert K, Vialard F, Thiery E, Toyama K, Sinet PM, Janel N, London J. Expression of the cystathionine beta synthase (CBS) gene during mouse development and immunolocalization in adult brain. J Histochem Cytochem

2003;51:363–371.

Rodrigo GC, Davies NW, Standen NB. Diazoxide causes early activation of cardiac sarcolemmal KATP channels during metabolic inhibition by an indirect mechanism. Cardiovasc Res. 2004 Feb 15;61(3):570-9.

Roux PP, Blenis J. ERK and p38 MAPK-activated protein kinases: A family of

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