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Esperto Universitario Biomedicina per Analisi Cliniche

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Academic year: 2022

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Esperto Universitario

Biomedicina per Analisi Cliniche

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Esperto Universitario

Biomedicina per Analisi Cliniche

Modalità: Online Durata: 6 mesi

Titolo: TECH Università Tecnologica Ore teoriche: 450 O.

Acceso web: www.techtitute.com/medicina/specializzazione/specializzazione-biomedicina-analisi-cliniche

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Indice

Presentazione

Metodologia Obiettivi

Direzione del corso

Titolo Struttura e contenuti

pag. 4

pag. 26 pag. 8

pag. 12

pag. 34 pag. 16

05 02

01 03

06

04

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La biomedicina è diventata una delle aree di lavoro con la maggiore proiezione scientifica negli ultimi tempi. Nel campo dell'analisi clinica, questo campo è di particolare rilevanza perché è la pietra angolare della diagnostica e della ricerca.

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Presentazione

01

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Presentazione | 05

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livello accademico e tecnologico"

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06 | Presentazione

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Un'altra area di conoscenza che lo studente svilupperà è il sistema immunitario, i suoi componenti molecolari e cellulari e le interazioni che avvengono tra loro per organizzare la risposta immunitaria. Analizzerà i meccanismi immunitari responsabili di patologie come l'ipersensibilità, l'autoimmunità, i trapianti, l'immunodeficienza e il tumore. Infine, espone le tecniche immunoanalitiche più utilizzate in un laboratorio clinico.

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Presentazione| 07

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Obiettivi

02

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Universitario in Biomedicina per Analisi Cliniche e conoscere gli ultimi progressi del settore"

Obiettivi | 09

(10)

10 | Obiettivi

Obiettivi generali

Š Consolidare ed estendere la conoscenza dell'immunologia nel contesto dell'analisi clinica

Š Interconnettere le conoscenze di immunologia per affrontare i problemi da diverse prospettive

Š Sviluppare il pensiero critico per interpretare e discutere i risultati analitici

Š Generare la capacità di apprendimento autonomo e la capacità di trasmettere le conoscenze acquisite in immunologia

Š Identificare le principali alterazioni ematologiche in un test analitico

Š Proporre gli esami complementari essenziali per l'approccio clinico dei pazienti con un'emopatia

Š Correlare i risultati di laboratorio con le entità cliniche

Š Stabilire una diagnosi differenziale delle principali discrasie del sangue

Š Analizzare ed eseguire le tecniche strumentali e i processi di raccolta dei campioni specificatamente applicati al laboratorio di analisi cliniche sanitarie, così come determinare i fondamenti e il corretto utilizzo degli strumenti necessari

Š Applicare tecniche strumentali per risolvere problemi di analisi della salute

Š Generare conoscenze specialistiche per svolgere i compiti di un laboratorio di analisi cliniche in termini di implementazione di nuovi metodi analitici e monitoraggio della qualità di quelli già implementati

Š Definire le procedure utilizzate nel laboratorio di analisi cliniche per l'uso delle diverse tecniche così come per la raccolta dei campioni e quegli aspetti relativi alla validazione, calibrazione, automazione ed elaborazione delle informazioni ottenute dalle procedure

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Obiettivi specifici

Obiettivi | 11

Modulo 1. Tecniche strumentali nel laboratorio di analisi

Š Compilare le tecniche strumentali utilizzate in un laboratorio di analisi cliniche

Š Determinare le procedure coinvolte nelle tecniche microscopiche, microbiologiche, spettrali, di biologia molecolare, di separazione e di conteggio delle cellule

Š Sviluppare i concetti teorici fondamentali per la comprensione di tecniche strumentali approfondite

Š Stabilire le applicazioni dirette delle tecniche strumentali di analisi clinica nella salute umana come elemento diagnostico e preventivo

Š Analizzare il processo prima dell'uso delle tecniche strumentali da sviluppare nel laboratorio di analisi cliniche

Š Giustificare le ragioni per l'utilizzo di una pratica piuttosto che un'altra in base alla diagnostica, al personale, alla gestione e ad altri fattori

Š Proporre l'apprendimento pratico delle tecniche strumentali attraverso l'uso di casi clinici, esempi pratici ed esercizi

Š Valutare le informazioni ottenute dall'uso di tecniche strumentali per l'interpretazione dei risultati

Modulo 2. Ematologia

Š Determinare le alterazioni quantitative e qualitative delle diverse cellule del sangue

Š Approfondire lo studio delle alterazioni delle serie rosse nel sangue periferico

Š Identificare le anomalie dei globuli bianchi e le loro cause principali

Š Presentare i disturbi piastrinici più comuni

Š Proporre una diagnosi differenziale delle sindromi mielodisplastiche e mieloproliferative

Š Analizzare la batteria di test complementari per la valutazione iniziale delle leucemie acute

Š Stabilire una diagnosi differenziale delle principali neoplasie linfoidi acute e croniche

Š Indicare le varie patologie della coagulazione

Š Stabilire linee guida appropriate per le procedure di trasfusione Modulo 3. Immunologia

Š Definire i componenti molecolari e cellulari e l'organizzazione degli organi del sistema immunitario

Š Analizzare le risposte immunitarie innate e adattative, sia umorali che cellulo- mediate

Š Esaminare i processi immunologici coinvolti in processi patologici come il cancro, il trapianto, l'autoimmunità e l'allergia

Š Applicare e integrare le tecniche immunoanalitiche più comunemente usate nell'analisi clinica

Š Diagnosticare le alterazioni del sistema immunitario sulla base della valutazione dei risultati analitici ottenuti

Š Sviluppare il pensiero integrato e il ragionamento critico per risolvere problemi immunologici

Š Proporre e progettare nuovi esperimenti per migliorare o incorporare nuove tecniche immunologiche, così come comprendere i loro limiti

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Direzione del corso

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Come parte del concetto di qualità totale del nostro corso, siamo orgogliosi di mettere a tua disposizione un corpo docente di altissimo livello, scelto per la sua comprovata esperienza. Professionisti di diverse aree e competenze che compongono un team multidisciplinare completo. Un'opportunità unica per imparare dai migliori.

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Direzione del corso | 13

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14 | Direzione del corso Direzione

Professori

Dott.ssa Aparicio Fernández, Cristina

Š Laureata in Biotecnologia con un Master in Immunologia Avanzata

Š Master interuniversitario in Immunologia Avanzata dell'Università di Barcellona e dell'Università Autonoma di Barcellona nel 2020

Š Laurea in Biotecnologia all'Università di León nel 2019

Dott.ssa Cano Armenteros, Montserrat

Laurea in Biologia Università di Alicante

Master in Studi Clinici Università di Siviglia

Master ufficiale in Ricerca sull’assistenza primaria presso l’Università Miguel Hernández di Alicante per il dottorato Riconoscimento dell'Università di Chicago, USA Eccezionale

Corso di Formazione di Attitudine Pedagogica (CAP) Università di Alicante

Dott.ssa Calle Guisado, Violeta

Š Dottorato in Salute Pubblica e Animale presso l'Università di Extremadura Cum laude e dottorato internazionale ottenuto nel luglio 2019 e premio di dottorato straordinario nel 2020

Š Laureata in Biologia presso l'Università di Extremadura nel 2012

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Direzione del corso | 15

Dott. Carmona Talavera, Diego

Š Laureato in Biochimica presso l'Università di Cordoba (2014)

Š Specialista in Analisi Cliniche via MIR (2020)

Š Master sulle Basi Teoriche e le Procedure di Laboratorio della Riproduzione Assistita presso l'Università di Valencia (2019)

Š Esperto Universitario in Genetica Medica e Genomica presso l'Università Cattolica San Antonio di Murcia (2020)

Š Diploma specialistico in gestione dei servizi sanitari dell'Università di Sevilla (2019)

Š Professore di Citologia, Istologia ed Embriologia presso GoBIR (2019)

Š Coordinatore di sede presso GoFIR di Valencia (dal 2019)

Š Docente di Biochimica, Biologia Molecolare e Genetica presso GoFIR (dal 2017)

Š Specialista in Analisi Cliniche, Responsabile di Laboratorio dell'Ospedale Vithas Valencia Consuelo (luglio - novembre 2020)

Š Membro della Commissione di Nuovi Specialisti AEFA (da luglio 2020)

Š Membro della Commissione Nazionale di Analisi Clinica per Residenti (da maggio 2018)

Š Biochimico interno di analisi cliniche presso l'Ospedale Universitario Dott. Peset di Valencia (2016-2020)

Š Borsa di studio di collaborazione del MECD nel Dipartimento di Biochimica e Biologia Molecolare della UCO (anno accademico 2013-2014)

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Struttura e contenuti

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I contenuti di questa Esperto Universitario per Esperto sono stati sviluppati da vari esperti in questo ambito con un chiaro obiettivo: permettere agli alunni di raggiungere tutte le abilità necessarie per diventare veri esperti in materia.

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Struttura e contenuti| 17

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interessante settore"

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Modulo 1. Tecniche strumentali nel laboratorio di analisi cliniche

1.1. Tecniche strumentali nelle analisi cliniche 1.1.1. Introduzione

1.1.2. Concetti fondamentali

1.1.3. Classificazione dei metodi strumentali 1.1.3.1. Metodi classici

1.1.3.2. Metodi strumentali

1.1.4. Preparazione di reagenti, soluzioni, tamponi e controlli 1.1.5. Calibrazione delle apparecchiature

1.1.5.1. Importanza della calibrazione 1.1.5.2. Metodi di calibrazione 1.1.6. Processo di analisi cliniche

1.1.6.1. Motivi per richiedere un'analisi clinica 1.1.6.2. Fasi che compongono il processo di analisi 1.1.6.3. Preparazione del paziente e raccolta del campione 1.2. Tecniche microscopiche nell'analisi clinica

1.2.1. Introduzione e concetti 1.2.2. Tipo di microscopi

1.2.2.1. Microscopi ottici 1.2.2.2. Microscopi elettronici 1.2.3. Lenti, luce e formazione dell'immagine

1.2.4. Funzionamento e manutenzione del microscopio a luce visibile 1.2.4.1. Gestione e proprietà

1.2.4.2. Manutenzione 1.2.4.3. Episodi di osservazione

1.2.4.4. Applicazione nelle analisi cliniche 1.2.5. Altri microscopi Caratteristiche e manipolazione

1.2.5.1. Microscopio a campo oscuro 1.2.5.2. Microscopio a luce polarizzata 1.2.5.3. Microscopio a interferenza 1.2.5.4. Microscopio invertito

1.2.5.5. Microscopio a luce ultravioletta 1.2.5.6. Microscopio a fluorescenza 1.2.5.7. Microscopio elettronico

18 | Struttura e contenuti

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Struttura e contenuti | 19

1.3. Tecniche microbiologiche nelle analisi cliniche 1.3.1. Introduzione e concetto

1.3.2. Progettazione e standard di lavoro del laboratorio di microbiologia clinica 1.3.2.1. Norme e risorse necessarie

1.3.2.2. Routine e procedure di laboratorio 1.3.2.3. Sterilità e contaminazione 1.3.3. Tecniche di coltura cellulare

1.3.3.1. Mezzi di coltura

1.3.4. Procedure di estensione e colorazione più comunemente usate in microbiologia clinica

1.3.4.1. Riconoscimento dei batteri 1.3.4.2. Citologiche

1.3.4.3. Altre procedure

1.3.5. Altri metodi di analisi microbiologica

1.3.5.1. Esame microscopico diretto: Identificazione della flora patogena e normale

1.3.5.2. Identificazione tramite test biochimici 1.3.5.3. Test immunologici rapidi

1.4. Tecniche volumetriche, gravimetriche, elettrochimiche e di titolazione 1.4.1. Volumetria. Introduzione e concetto

1.4.1.1. Classificazione dei metodi

1.4.1.2. Procedura di laboratorio per eseguire la volumetria 1.4.2. Gravimetria

1.4.2.1. Introduzione e concetto

1.4.2.2. Classificazione dei metodi gravimetrici

1.4.2.3. Procedura di laboratorio per eseguire una gravimetria 1.4.3. Tecniche elettrochimiche

1.4.3.1. Introduzione e concetto 1.4.3.2. Potenziometria 1.4.3.3. Amperometria 1.4.3.4. Coulometria 1.4.3.5. Conduttimetria

1.4.3.6. Applicazione nelle analisi cliniche

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1.4.4. Valutazioni 1.4.4.1. Acido-base 1.4.4.2. Precipitazione

1.4.4.3. Formazione del complesso 1.4.4.4. Applicazione nelle analisi cliniche 1.5. Tecniche spettrali nell'analisi clinica

1.5.1. Introduzione e concetti

1.5.1.1. La radiazione elettromagnetica e la sua interazione con la materia 1.5.1.2. Assorbimento ed emissione di radiazioni

1.5.2. Spettrofotometria. Applicazione nelle analisi cliniche 1.5.2.1. Strumentazione

1.5.2.2. Procedura

1.5.3. Spettrofotometria di assorbimento atomico 1.5.4. Fotometria a emissione di fiamma

1.5.5. Fluorimetria

1.5.6. Nefelometria e turbidimetria 1.5.7. Riflettanza e spettrometria di massa

1.5.7.1. Strumentazione 1.5.7.2. Procedura

1.5.8. Applicazioni delle tecniche spettrali più comunemente usate attualmente nell'analisi clinica

1.6. Tecniche di immunodosaggio nell'analisi clinica 1.6.1. Introduzione e concetti

1.6.1.1. Concetti di immunologia 1.6.1.2. Tipi di test immunologici 1.6.1.3. Reattività incrociata e antigene 1.6.1.4. Molecole di rilevamento

1.6.1.5. Quantificazione e sensibilità analitica 1.6.2. Tecniche immunoistochimiche

1.6.2.1. Concetto

1.6.2.2. Procedura di immunoistochimica 1.6.3. Tecnica immunoistochimica enzimatica

1.6.3.1. Concetto e procedura

20 | Struttura e contenuti

1.6.4. Immunofluorescenza

1.6.4.1. Concetto e classificazione 1.6.4.2. Procedura di immunofluorescenza 1.6.5. Altri metodi immunologici

1.6.5.1. Immunofleometria 1.6.5.2. Immunodiffusione radiale 1.6.5.3. Immunoturbidimetria

1.7. Tecniche di separazione nell'analisi clinica. Cromatografia ed elettroforesi 1.7.1. Introduzione e concetti

1.7.2. Tecniche cromatografiche

1.7.2.1. Principi, concetti e classificazione

1.7.2.2. Cromatografia gas-liquido: Concetti e procedura

1.7.2.3. Cromatografia liquida ad alte prestazioni: Concetti e procedura 1.7.2.4. Cromatografia su strato sottile

1.7.2.5. Applicazione nelle analisi cliniche 1.7.3. Tecniche elettroforetiche

1.7.3.1. Introduzione e concetti 1.7.3.2. Strumentazione e procedura

1.7.3.3. Scopo e campo di applicazione nell'analisi clinica 1.7.3.4. Elettroforesi capillare

1.7.3.4.1. Elettroforesi delle proteine del siero

1.7.4. Tecniche ibride: Masse ICP, masse di gas e masse di liquidi 1.8. Tecniche di biologia molecolare nell'analisi clinica

1.8.1. Introduzione e concetti

1.8.2. Tecnica di estrazione di DNA e RNA 1.8.2.1. Procedura e conservazione 1.8.3. Reazione a catena della polimerasi PCR

1.8.3.1. Concetto e motivazione 1.8.3.2. Strumentazione e procedura 1.8.3.3. Modifiche al metodo PCR 1.8.4. Tecniche di ibridazione

1.8.5. Sequenziamento

1.8.6. Analisi delle proteine tramite Western 1.8.7. Proteomica e genomica

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1.8.7.1. Concetti e procedure nell'analisi clinica 1.8.7.2. Tipi di studi di proteomica

1.8.7.3. Bioinformatica e proteomica 1.8.7.4. Metabolomica

1.8.7.5. Rilevanza in biomedicina

1.9. Tecniche per la determinazione degli elementi formali: Citometria a flusso. Analisi nel letto del paziente

1.9.1. Conteggio dei globuli rossi

1.9.1.1. Conteggio delle cellule: Procedura

1.9.1.2. Patologie diagnosticate con questa metodologia 1.9.2. Conteggio dei leucociti

1.9.2.1. Procedura

1.9.2.2. Patologie diagnosticate con questa metodologia 1.9.3. Citometria di flusso

1.9.3.1. Introduzione e concetti 1.9.3.2. Procedura tecnica

1.9.3.3. Applicazioni della citometria nell'analisi clinica 1.9.3.3.1. Applicazioni in oncoematologia

1.9.3.3.2. Applicazioni per l'Allergia 1.9.3.3.3. Applicazioni per l'infertilità 1.9.4. Analisi a letto del paziente

1.9.4.1. Concetto 1.9.4.2. Tipi di campioni 1.9.4.3. Tecniche usate

1.9.4.4. Applicazioni di analisi a letto del paziente più utilizzate 1.10. Interpretazione dei risultati, valutazione dei metodi analitici e delle interferenze

analitiche

1.10.1. Referto di laboratorio 1.10.1.1. Concetto

1.10.1.2. Elementi caratteristici del rapporto di laboratorio 1.10.1.3. Interpretazione del referto

1.10.2. Valutazione dei metodi analitici nell'analisi clinica 1.10.2.1. Concetti e obiettivi

1.10.2.2. Linearità 1.10.2.3. Veridicità 1.10.2.4. Precisione 1.10.3. Interferenze analitiche

1.10.3.1. Concetto, fondamenti e classificazione 1.10.3.2. Interferenze endogene

1.10.3.3. Agenti interferenti esogeni

1.10.3.4. Procedure per rilevare e quantificare un'interferenza in un metodo o un'analisi specifica

Modulo 2. Ematologia

2.1. Introduzione al sistema ematopoietico e tecniche di studio 2.1.1. Classificazione delle cellule del sangue ed ematopoiesi 2.1.2. Emocitometria e studio del campione di sangue 2.1.3. Studio del midollo osseo

2.1.4. Ruolo dell'immunofenotipizzazione nella diagnosi delle emopatie 2.1.5. Citogenetica e biologia molecolare nella diagnosi ematologica

2.2. Diagnosi dei disturbi eritrocitari. Anemie, eritrocitosi, emoglobinopatie e talassemie 2.2.1. Classificazione dei tipi di anemia

2.2.1.1. Classificazione eziopatogenetica 2.2.1.2. Classificazione secondo il CVM

2.2.1.2.1. Anemia microcitica 2.2.1.2.2. Anemia normocitica 2.2.1.2.3. Anemia macrocitica 2.2.2. Eritrocitosi. Diagnosi differenziale

2.2.2.1. Eritrocitosi primaria 2.2.2.2. Eritrocitosi secondaria 2.2.3. Emoglobinopatie e talassemie

2.2.3.1. Classificazione 2.2.3.2. Diagnosi di laboratorio

Struttura e contenuti | 21

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22 | Struttura e contenuti

2.6.2.4. Macroglobulinemia di Waldenström 2.7. Diagnosi differenziale delle leucemie acute

2.7.1. Leucemia mieloide acuta. Leucemia prolinfocitica 2.7.1.1. Risultati di laboratorio ed esami complementari 2.7.1.2. Emogramma e campione di sangue periferico 2.7.1.3. Studio del midollo osseo

2.7.1.3.1. Morfologia del midollo osseo 2.7.1.3.2. Citometria di flusso

2.7.1.3.3. Citogenetica 2.7.1.3.4. Biologia molecolare 2.7.1.4. Classificazione diagnostica 2.7.2. Leucemia linfoide acuta

2.7.2.1. Risultati di laboratorio ed esami complementari 2.7.2.2. Emogramma e campione di sangue periferico 2.7.2.3. Studio del midollo osseo

2.7.1.3.1. Morfologia del midollo osseo 2.7.1.3.2. Citometria di flusso

2.7.1.3.3. Citogenetica 2.7.1.3.4. Biologia molecolare 2.7.2.4. Classificazione diagnostica 2.8. Neoplasie B e T mature

2.8.1. Sindromi linfoproliferative croniche B e leucemia linfocitica cronica 2.8.1.1. Studi di laboratorio e diagnosi differenziale

2.8.1.1.1. Leucemia linfocitica cronica 2.8.1.1.2. Tricoleucemia

2.8.1.1.3. Linfoma della zona marginale splenica 2.8.1.1.4. Leucemia prolinfocitica

2.3. Alterazioni quantitative della serie bianca e sindromi mieloproliferative e mielodisplastiche

2.3.1. Neutrofili: Neutropenia e neutrofilia 2.3.2. Linfociti: linfopenia e linfocitosi 2.4. Diagnosi delle alterazioni delle piastrine

2.4.1. Alterazioni morfologiche: trombocitopatie 2.4.2. Trombocitopenie: Approccio diagnostico 2.5. Sindromi mieloproliferative e mielodisplastiche

2.5.1. Risultati di laboratorio ed esami complementari 2.5.1.1. Emogramma e campione di sangue periferico 2.5.1.2. Studio del midollo osseo

2.5.1.2.1. Morfologia del midollo osseo 2.5.1.2.2. Citometria di flusso

2.5.1.2.3. Citogenetica 2.5.1.2.4. Biologia molecolare

2.5.2. Classificazione diagnostica: Diagnosi differenziale 2.6. Gammopatie monoclonali: Mieloma multiplo

2.6.1. Studio delle gammopatie monoclonali 2.6.1.1. Morfologia del midollo osseo

2.6.1.2. Studio della componente monoclonale 2.6.1.3. Altri studi di laboratorio

2.6.2. Classificazione delle gammopatie monoclonali: Diagnosi differenziale 2.6.2.1. Gammopatia monoclonale di significato incerto e mieloma quiescente

2.6.2.2. Mieloma multiplo 2.6.2.2.1. Criteri diagnostici 2.6.2.3. Amiloidosi

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Struttura e contenuti | 23

2.8.1.1.5. Leucemia a linfociti granulari 2.8.2. Linfomi non-Hodgkin

2.8.2.1. Studio iniziale e diagnosi

2.8.2.2. Classificazione delle neoplasie linfoidi 2.8.2.2.1. Linfoma follicolare

2.8.2.2.2. Linfoma a cellule di mantello 2.8.2.2.3. Linfoma B diffuso di cellule grandi 2.8.2.2.4. Linfoma MALT

2.8.2.2.5. Linfoma di Burkitt 2.8.2.2.6. Linfomi T periferici 2.8.2.2.7. Linfomi cutanei 2.8.2.2.8. Altri

2.8.3. Linfoma di Hodgkin

2.8.3.1. Esami complementari 2.8.3.2. Classificazione istologica 2.9. Diagnosi dei disturbi della coagulazione

2.9.1. Studio della diatesi emorragica 2.9.1.1. Esami iniziali

2.9.1.2. Studi specifici

2.9.2. Disturbi congeniti della coagulazione 2.9.2.1. Emofilia A e B

2.9.2.2. Malattia di von Willebrand 2.9.2.3. Altre coagulopatie congenite 2.9.3. Alterazioni acquisite della coagulazione

2.9.4. Trombosi e trombofilia. Sindrome antifosfolipidica 2.9.5. Monitoraggio della terapia anticoagulante 2.10. Introduzione all'emoterapia

2.10.1. Gruppi sanguigni 2.10.2. Componenti del sangue

2.10.3. Raccomandazioni per l'uso di prodotti sanguigni 2.10.4. Reazioni trasfusionali più comuni

Modulo 3. Immunologia

3.1. Organi del sistema immunitario 3.1.1. Organi linfoidi primari

3.1.1.1. Fegato fetale 3.1.1.2. Midollo osseo 3.1.1.3. Timo

3.1.2. Organi linfoidi secondari 3.1.2.1. Milza

3.1.2.2. Linfonodi

3.1.2.3. Tessuto linfoide associato alla mucosa 3.1.3. Organi linfoidi terziari

3.1.4. Sistema linfatico 3.2. Cellule del sistema immunitario

3.2.1. Granulociti 3.2.1.1. Neutrofili 3.2.1.2. Eosinofili 3.2.1.3. Basofili 3.2.2. Monociti e macrofagi 3.2.3. Linfociti

3.2.3.1. Linfociti T 3.2.3.2. Linfociti B 3.2.4. Cellule Natural Killer

3.2.5. Cellule che presentano l’antigene 3.3. Antigeni e immunoglobuline

3.3.1. Antigenicità e immunogenicità 3.3.1.1. Antigene

3.3.1.2. Immunogene 3.3.1.3. Epitopi

3.3.1.4. Apteno e portatori 3.3.2. Immunoglobuline

3.3.2.1. Struttura e funzione

3.3.2.2. Classificazione delle immunoglobuline

3.3.2.3. Ipermutazione somatica e spostamento dell'isotipo

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24 | Struttura e contenuti

3.4. Sistema del complemento 3.4.1. Funzioni

3.4.2. Percorsi di attivazione 3.4.2.1. Via classica 3.4.2.2. Via alternativa 3.4.2.3. Via lectinica 3.4.3. Recettori del complemento 3.4.4. Complemento e infiammazione 3.4.5. Cascata delle chinine

3.5. Complesso maggiore di istocompatibilità

3.5.1. Antigeni di istocompatibilità maggiori e minori 3.5.2. Genetica HLA

3.5.3. HLA e malattia

3.5.4. Immunologia del trapianto 3.6. Risposta immunitaria

3.6.1. Risposta immunitaria innata e adattativa 3.6.2. Risposta immunitaria umorale

3.6.2.1. Risposta primaria 3.6.2.2. Risposta secondaria 3.6.3. Risposta immuno-cellulare 3.7. Malattie autoimmuni

3.7.1. Tolleranza immunogenica 3.7.2. Autoimmunità

3.7.3. Malattie autoimmuni

3.7.4. Studio delle malattie autoimmuni 3.8. Immunodeficienze

3.8.1. Immunodeficienze primarie 3.8.2. Immunodeficienze secondarie 3.8.3. Immunità antitumorale 3.8.4. Valutazione dell'immunità

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Struttura e contenuti | 25

3.9. Reazioni di ipersensibilità

3.9.1. Classificazione delle reazioni di ipersensibilità 3.9.2. Reazioni allergiche o di ipersensibilità di tipo I 3.9.3. Anafilassi

3.9.4. Metodi diagnostici allergologici 3.10. Tecniche immunoanalitiche

3.10.1. Tecniche di precipitazione e agglutinazione 3.10.2. Tecniche di fissazione del complemento 3.10.3. Tecniche di ELISA

3.10.4. Tecniche di immunocromatografia 3.10.5. Tecniche di radioimmunanalisi 3.10.6. Isolamento di linfociti

3.10.7. Tecnica di microlinfocitotossicità 3.10.8. Coltura di linfociti misti

3.10.9. Citometria a flusso applicata all'immunologia 3.10.10. Citometria di flusso

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05 Metodologia

Questo programma ti offre un modo differente di imparare. La nostra metodologia si sviluppa in una modalità di apprendimento ciclico: il Relearning.

Questo sistema di insegnamento viene applicato nelle più prestigiose facoltà di medicina del mondo ed è considerato uno dei più efficaci da importanti pubblicazioni come il New England Journal of Medicine.

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Metodologia | 27

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28 | Metodologia

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Durante il programma affronterai molteplici casi clinici simulati ma basati su pazienti reali, per risolvere i quali dovrai indagare, stabilire ipotesi e infine fornire una soluzione.

Esistono molteplici prove scientifiche sull'efficacia del metodo. Gli specialisti imparano meglio e in modo più veloce e sostenibile nel tempo.

Secondo il dottor Gérvas, il caso clinico è una presentazione con osservazioni del paziente, o di un gruppo di pazienti, che diventa un "caso", un esempio o un modello che illustra qualche componente clinica particolare, sia per il suo potenziale didattico che per la sua singolarità o rarità. È essenziale che il caso faccia riferimento alla vita professionale attuale, cercando di ricreare le condizioni reali della pratica professionale del medico.

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In TECH applichiamo il Metodo Casistico

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Metodologia | 29

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Il metodo casistico consisteva nel presentare situazioni reali complesse per far prendere loro decisioni e giustificare come risolverle. Nel

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30 | Metodologia

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Metodologia Relearning

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