2 Materiali e metodi
2.4 Analisi statistica
Per l’analisi statistica è stato utilizzato un software commerciale (GraphPad Prism 5). La distribuzione dei dati è stata valutata tramite il D'Agostino & Pearson omnibus test. I valori di peso ed età sono stati espressi come mediana (median) e range (minimum-maximum). I valori della SWV (m/s) e del modulo elastico (kPa) ottenuti in ciascun soggetto, sia in fase anestesiologica che pre-anestesiologica, come media +/- SD.
Il confronto tra i valori medi ottenuti in fase anestesiologica e quelli in fase pre- anestesiologica è stato effettuato tramite Unpaired t-test. La significatività statistica è stata definita per una P<0.05.
49
3 RISULTATI
Nel nostro studio sono stati inclusi 20 cani, 11 femmine (di cui 6 sterilizzate) e 9 maschi (di cui 3 castrati), di razze diverse (5 Golden retriever, 8 Labrador retriever, 1 Setter irlandese, 1 Cocker spaniel, 1 Shar pei, 1 Greyhound e 3 meticci), di età mediana di 1,5 anni (1-7 anni) e peso mediano di 27,8 kg (3,95-40 kg), come riassunto in tabella 1.
razza
Età
(anni) sesso Peso
(kg) Caso 1 Labrador retriever 1,50 M 33,6 Caso 2 Golden retriever 1,50 F 30 Caso 3 Golden retriever 1,50 F 27 Caso 4 Labrador retriever 1,00 M 40 Caso 5 Labrador retriever 1,50 FS 27,8 Caso 6 Labrador retriever 2,00 MC 34 Caso 7 Labrador retriever 1,50 FS 25,2 Caso 8 Labrador retriever 1,50 FS 30 Caso 9 Labrador retriever 1,50 F 31 Caso 10 meticcio 1,50 F 17 Caso 11 Shar pei 7,00 FS 16 caso 12 meticcio 4,00 M 15 Caso 13 meticcio 1,50 M 3,95 Caso 14 Cocker spaniel 1,00 M 10 Caso 15 Setter Irlandese 1,50 M 22,6 Caso 16 Golden retriever 2,00 MC 38 Caso 17 Golden retriever 2,00 FS 27,8 Caso 18 Labrador retriever 1,50 MC 34 Caso 19 Golden retriever 2,00 FS 28 Caso 20 Greyhound 1,50 F 25,5
L’esame elastosonografico è stato effettuato in 14 soggetti svegli ed in 12 soggetti in fase anestesiologica (tabella 2). Di questi, 8 sono stati esaminati solamente da svegli, 5 solamente in fase anestesiologica e 7 sia in fase pre-anestesiologica che in fase anestesiologica. Nei soggetti esaminati solamente in fase anestesiologica non è stato possibile effettuare l’esame in fase pre-anestesiologica a causa degli artefatti da movimento ottenuti.
50
Casi Fase speed [m/s]
elasticity [kPa] Caso 1 Pre-anestesiologica / / Anestesiologica 1.31 ± 0.04 5.0 ± 0.3 Caso 2 Pre-anestesiologica 1.31 ± 0.11 5.1 ± 0.9 Anestesiologica 1.44 ± 0.12 6.1 ± 1.0 Caso 3 Pre-anestesiologica 1.26 ± 0.05 4.6 ± 0.4 Anestesiologica 1.56 ± 0.06 7.2 ± 0.6 Caso 4 Pre-anestesiologica / / Anestesiologica 1.41 ± 0.05 5.8 ± 0.4 Caso 5 Pre-anestesiologica 1.23 ± 0.04 4.4 ± 0.3 Anestesiologica 1.36 ± 0.07 5.4 ± 0.6 Caso 6 Pre-anestesiologica 1.3 ± 0.07 5.1 ± 0.6 Anestesiologica 1.62 ± 0.12 7.8 ± 1.2 Caso 7 Pre-anestesiologica / / Anestesiologica 1.48 ± 0.08 6.5 ± 0.7 Caso 8 Pre-anestesiologica / / Anestesiologica 1.48 ± 0.05 6.4 ± 0.4 Caso 9 Pre-anestesiologica / / Anestesiologica 1.46 ± 0.05 6.3 ± 0.5 Caso 10 Pre-anestesiologica 1.4 ± 0.07 5.8 ± 0.6 Anestesiologica 1.79 ± 0.08 9.5 ± 0.8 Caso 11 Pre-anestesiologica 1.24 ± 0.06 4.6 ± 0.5 Anestesiologica / / Caso 12 Pre-anestesiologica 1.34 ± 0.10 5.3 ± 0.8 Anestesiologica / / Caso 13 Pre-anestesiologica 1.27 ± 0.05 4.7 ± 0.4 Anestesiologica / / Caso 14 Pre-anestesiologica 1.4 ± 0.11 5.8 ± 0.9 Anestesiologica / / Caso 15 Pre-anestesiologica 1.26 ± 0.07 4.7 ± 0.5 Anestesiologica / / Caso 16 Pre-anestesiologica 1.34 ± 0.07 5.3 ± 0.5 Anestesiologica 1.43 ± 0.04 6.0 ± 0.3 Caso 17 Pre-anestesiologica 1.4 ± 0.12 5.8 ± 1 Anestesiologica 1.35 ± 0.06 5.3 ± 0.5 Caso 18 Pre-anestesiologica 1.4 ± 0.06 5.8 ± 0.5 Anestesiologica / / Caso 19 Pre-anestesiologica 1.46 ± 0.05 6.3 ± 0.4 Anestesiologica / / Caso 20 Pre-anestesiologica 1.4 ± 0.12 5.8 ± 5.9 Anestesiologica / /
Tab. 2 Valori delle misurazioni della SWV e del modulo elastico espressi rispettivamente in
51 Dalle misurazioni effettuate nei 14 soggetti svegli, la media della SWV è risultata essere 1.32 (+/- 0.06) m/s ed il modulo elastico 5.2 (+/- 0.53) kPa.
Dalle misurazioni effettuate nei 12 soggetti sottoposti ad anestesia generale, la media della SWV è risultata essere 1.44 (+/- 0.09) m/s, ed il modulo elastico 6.16 (+/- 0.82) kPa.
Per quanto riguarda lo studio dei soggetti sottoposti ad esame 2-D SWE nelle due differenti fasi pre-anestesiologica ed anestesiologica (figura 14), i valori medi di SWV (m/s) e modulo elastico (kPa) ottenuti in ciascuna fase sono stati confrontati tramite Unpaired t-test. Da questo confronto è emersa una differenza significativa (P<0.05) tra i valori ottenuti nelle due differenti fasi, sia per il valore di SWV (P=0.0008) che per il valore del modulo elastico (P=0.0017).
Tra i soggetti esaminati in fase anestesiologica, quelli provenienti dalla Scuola Cani Guida per Ciechi (10/12) sono stati tutti sottoposti al medesimo protocollo anestesiologico, che prevedeva premedicazione con dexmedetomidina, metadone, ketamina intramuscolari, induzione con propofol e mantenimento con isoflorano.
I restanti soggetti esaminati in fase anestesiologica (2/12), sono stati sottoposti a protocollo anestesiologico che prevedeva premedicazione con fentanyl, induzione con propofol e mantenimento con isoflorano.
52
Fig.14 Immagini SWE del fegato di cane sano, ottenute nello stesso soggetto in decubito sinistro
con posizionamento della sonda a livello intercostale destro in fase pre-anestesiologica (A) ed in fase anestesiologica (B) (Fonte: Ospedale Didattico “Mario Modenato”, Dipartimento di Scienze Veterinarie dell’Università di Pisa).
53
4 DISCUSSIONE
Il nostro studio preliminare ha avuto come obiettivi la valutazione dell’effettiva applicabilità della tecnica 2-D SWE, la ricerca di un range di riferimento per le misurazioni elastosonografiche epatiche nel cane sano e la valutazione di una differenza significativa tra le misurazioni effettuate in fase pre-anestesiologica ed anestesiologica.
Durante il nostro studio la 2-D SWE si è dimostrata una metodica diagnostica non invasiva e facilmente eseguibile. La sua applicazione è risultata più semplice e rapida nei soggetti sottoposti ad anestesia generale, in quanto durante le misurazioni epatiche non erano presenti artefatti da movimento indotti dalla respirazione (tachipnea, polipnea) o da spostamenti del paziente stesso.
I valori della SWV (m/s) e del modulo elastico (kPa) ottenuti nei 14 soggetti svegli sono risultati concordi con quelli indicati da un precedente studio [13] condotto su un gruppo di 8 cani sani. Permane la necessità di ulteriori studi che possano fornire un range di riferimento di elasticità epatica nel cane sano.
I valori della SWV (m/s) e del modulo elastico (kPa) ottenuti dall’esame dei 12 soggetti sottoposti ad anestesia generale sono risultati significativamente più elevati rispetto a quelli ottenuti nei pazienti non sottoposti ad anestesia. In medicina umana è noto che un aumento della rigidità epatica può essere dovuto a varie circostanze: fibrosi, stato post-prandiale [103], esercizio fisico [104], infiammazione acuta con aumento delle transaminasi [105], congestione epatica in corso di insufficienza cardiaca destra [106], ostruzione biliare [107]. Età, sesso ed indice di massa corporea sembrano non influenzare le misurazioni elastosonografiche epatiche, mentre risulta tuttora incerta l’influenza della steatosi epatica [108]. Per quanto riguarda il nostro studio, l’aumento della rigidità del fegato potrebbe essere dovuto all’effetto dei farmaci anestetici sulla vascolarizzazione epatica. In medicina umana uno studio [109] ha confermato l’associazione tra somministrazione di propofol e conseguente aumento del flusso vascolare epatico. In particolare, tale farmaco è risultato determinare un aumento dell’indice di flusso a livello della vena epatica destra. Non sono al momento noti studi che confermino tale associazione anche nei piccoli animali. Per quanto riguarda l’utilizzo della ketamina, secondo uno studio di medicina umana [110] questa non sembra determinare alterazioni significative degli indici emodinamici epatici e sistemici.
54 Dati questi studi e vista la somministrazione di propofol in tutti i soggetti esaminati in fase anestesiologica inclusi nel nostro studio, l’aumento della rigidità epatica potrebbe essere dovuta all’effetto di tale farmaco sulla vascolarizzazione epatica. Risultano tuttavia necessari ulteriori studi che valutino l’effettiva influenza dei farmaci anestetici sulle misurazioni elastosonografiche.
Il nostro studio preliminare ha presentato limiti quali un ridotto numero di soggetti inclusi (n. 20) ed una ridotta variabilità tra questi per quanto riguarda età, peso e razza. Tra i soggetti inclusi, 18/20 presentavano età compresa tra 1 e 2 anni e 14/20 un peso compreso tra 14 e 40 kg. Inoltre, i soggetti erano prevalentemente di razza di taglia media (Labrador retriever 8/20, Golden retriever 5/20, Setter irlandese 1/20, Greyhound 1/20).
Risultano necessari ulteriori studi che prendano in considerazione un maggior numero di soggetti al fine di ottenere una maggior variabilità ed indagare le possibili differenze elastosonografiche epatiche legate ad età e peso.
Durante il nostro studio non sono state valutate le variabilità intra- ed inter-operatore. Esse sono state valutate in un precedente studio condotto nel 2019 [13], che ha indicato elevate riproducibilità e ripetibilità dell’esame 2-D SWE del fegato in cani sani non sedati.
Un ulteriore limite del nostro studio è stato la mancanza di un protocollo anestesiologico standardizzato ed uguale per tutti i soggetti esaminati in fase anestesiologica.
55
5 CONCLUSIONI
In conclusione, la 2-D SWE si è dimostrata una metodica diagnostica utile, veloce e non invasiva nella valutazione dell’elasticità epatica.
Nel nostro studio, le misurazioni elastosonografiche sono risultate altamente soggette ad artefatti da movimento nei pazienti svegli, e la fattibilità dell’esame è risultata migliore nei pazienti esaminati in anestesia generale.
In base al nostro studio, le differenze riscontrate tra le misurazioni effettuate in soggetti svegli e soggetti in fase anestesiologica potrebbero essere dovute all’effetto indotto dal farmaco anestetico utilizzato.
L’elastosonografia epatica si presenta come una metodica promettente sia nella diagnosi sia nel monitoraggio di alcune epatopatie. La sua inclusione nel normale iter diagnostico potrebbe permettere di rilevare alterazioni del parenchima epatico precoci o non rilevabili con esame ecografico tradizionale.
Sono tuttavia necessari ulteriori studi per determinare un range di riferimento dei valori elastosonografici epatici nel cane sano, che permettano di distinguere un aspetto elastosonografico patologico. Inoltre, sono necessarie ulteriori indagini al fine di stabilire l’effettiva influenza del protocollo anestesiologico sulle misurazioni elastosonografiche del fegato, al fine di poter valutare la reale elasticità epatica del paziente.
56
BIBLIOGRAFIA
1 Bamber J. Ultrasound elasticity imaging: Definition and technology. European radiology, 1999; 9(3):327-330.
2 Ferraioli G., Wong V.W., Castera L., et al. Liver Ultrasound Elastography: An Update to the World Federation for Ultrasound in Medicine and Biology Guidelines and Recommendations. Ultrasound Med Biol., 2018; 44(12):2419-2440.
3 Cosgrove D., Piscaglia F., Bamber J., et al. EFSUMB Guidelines and Recommendations on the Clinical Use of Ultrasound Elastography. Part 2: Clinical Applications. Ultraschall in Med, 2013; 34: 238-253.
4 Ophir J., Céspedes I., Ponnekanti H., et al. Elastography: a quantitative method for imaging the elasticity of biological tissues. Ultrasonic Imaging, 1991; 13(2):111-34.
5 Parker K.J., Huang S.R., Musulin R.A., et al. Tissue response to mechanical vibrations for "sonoelasticity imaging". Ultrasound Med Biol, 1990; 16(3):241-6.
6 Parker K.J., Doyley M.M., Rubens D.J. Imaging the elastic properties of tissue: the 20 years perspective. Phys Med Biol. 2011; 7;56(1):1-29.
7 Ferraioli G., Tinelli C., Dal Bello B., et al. Accuracy of real-time shear wave elastography for assessing liver fibrosis in chronic hepatitis C: a pilot study. Hepatology., 2012; 56:2125– 2133.
8 Herrmann E., de Ledinghen V., Cassinotto C., et al. Assessment of biopsy-proven liver fibrosis by two-dimensional shear wave elastography: an individual patient databased meta- analysis. Hepatology, 2018; 67:260–272.
9 Bende F., Sporea I., Sirli R., et al. Performance of 2D-SWE.GE for predicting different stages of liver fibrosis, using transient elastography as the reference method. Med Ultrason, 2017; 19:143–149.
10 Ferraioli G., Maiocchi L., Lissandrin R., et al. Accuracy of the latest release of a 2D shear wave elastography method for staging liver fibrosis in patients with chronic hepatitis C: preliminary results. Dig Liver Dis., 2016; 48(1):62–63.
57 11 Holdsworth A., Bradley K., Birch S., et al. Elastography of the normal canine liver, spleen and kidneys. Vet Radiol Ultrasound. 2014; 55:620-627.
12 Feng Y.H., Hu X.D., Zhai L., et al. Shear wave elastography results correlate with liver fibrosis histology and liver function reserve. World J Gastroenterol 2016; 22:4338-4344. 13 Tamura M., Ohta H., Nisa K., et al. Evaluation of liver and spleen stiffness of healthy dogs by use of two-dimensional shear wave elastography. Am J Vet Res. 2019; 80(4):378- 384.
14 Jung J.W, Je H., Lee S.K., et al. Two-Dimensional shear wave elastography of normal soft tissue organs in adult beagle dogs; interobserver agreement and sources of variability. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology, 2020; 8:979.
15 Shiina T., Nightingale K. R., Palmeri M. L., et al. WFUMB guidelines and recommendations for clinical use of ultrasound elastography: part 1: basic principles and terminology. Ultrasound Med. Biol., 2015; 41, 1126–1147.
16 Bamber J., Cosgrove D., Dietrich C.F., et al. EFSUMB Guidelines and recommendations on the Clinical Use of Ultrasound Elastography. Part 1: basic principles and technology. Ultraschall in Med, 2013; 34:169-184.
17 Hoskins P.R. Principles of ultrasound elastography. Ultrasound, 2012; 20: 8–15.
18 Palmeri M.L., Sharma A.C., Bouchard R.R., et al. A finite element method model of soft tissue response to impulsive acoustic radiation force. Ultrasound Med Biol, 2005; 52: 1699- 1712.
19 Gennisson J.L., Deffieux T., Fink M., et al. Ultrasound elastography: Principles and techniques, Diagnostic and Interventional imaging, 2013; 94(5): 487-495
20 Sarvazyan A., Skovoroda A.R., Emelianov S., et al. Biophysical bases of elasticity imaging. Acoustical Imaging, 1995; 21:223-41.
21 Engineering ToolBox, Young’s Modulus: Tensile and Yeld Strenght for common materials. Accessed december 27, 2020 engineeringtoolbox.com/young-modulus- d_417.html
58 22 Helmenstine A. M., What Is the Shear Modulus. Accessed December 27, 2020, thoughtco.com/shear-modulus-4176406.
23 Engineering ToolBox, Poisson's ratio. Accessed December 27, 2020 engineeringtoolbox.com/poissons-ratio-d_1224.html
24 Garra B.S. Elastography: history, principles, and technique comparison. Abdom Imaging, 2015; 40:680–697
25 Sporea I., Bota S., Săftoiu A., et al. Romanian national guidelines and practical recommendations on liver elastography. Med Ultrason., 2014; 16(2):123-38.
26 Rouze N.C., Wang M.H., Palmeri M.L., et al. Parameters affecting the resolution and accuracy of 2-D quantitative shear wave images. IEEE Trans Ultrason Ferroelectr Freq Control, 2012; 59:1729–1740.
27 Heide R., Strobel D., Bernatik T., et al. Characterization of focal liver lesions (FLL) with acoustic radiation force impulse (ARFI) elastometry. Ultraschall Med, 2010; 31:405-409 28 Deffieux T., Montaldo G., Tanter M., et al. Shear wave spectroscopy for in vivo quantification of human soft tissues visco-elasticity. IEEE Trans Med Imaging 2009, 28:313– 322.
29 McLaughlin J., Renzi D. Shear wave speed recovery in transient elastography and supersonic imaging using propagating fronts. Inverse Problems, 2006; 22:707–725.
30 Yoo J., Lee J.M., Joo I., et al. Assessment of liver fibrosis using 2-dimensional shear wave elastography: a prospective study of intra- and inter-observer repeatability and comparison with point shear wave elastography. Ultrasonography, 2020; 39(1):52-59. 31 Wells P., Hai-Dong L. Medical Ultrasound: imaging of soft tissue strain and elasticity. J.R. Soc. Interface, 2011; 8: 1521-1549.
32 Monetti G. Ecografia muscolo-scheletrica – Elastosonografia. Timeo Editore, 2011.
33 Silveira J.S., Scansen B.A., Wassenaar P.A. et al. MR elastography-derived right ventricular myocardial stiffness in dogs with congenital pulmonary valve stenosis: correlation with myocardial relaxation times and ECV. J Cardiovasc Magn Reson, 2014; 16:82.
59 34 Manduca A., Oliphant T.E., Dresner M.A., et al. Magnetic Resonance Elastography: non- invasive mapping of tissue elasticity. Med Image Anal, 2001; 5: 237-254.
35 Mariappan Y.K., Glaser K.J., Ehman R.L. Magnetic Resonance Elastography: a review. Clin Anat, 2010; 23: 497-511.
36 Marcellin P., Gane E., Buti M., et al. Regression of cirrhosis during treatment with tenofovir disoproxil fumarate for chronic hepatitis B: a 5-year open-label follow-up study. Lancet, 2013; 381(9865):468–475.
37 Carrión J.A., Navasa M., García-Retortillo M., et al. Efficacy of antiviral therapy on hepatitis C recurrence after liver transplantation: a randomized controlled study. Gastroenterology, 2007; 132(5):1746–1756.
38 Martinez S.M., Foucher J., Combis J.M., et al. Longitudinal liver stiffness assessment in patients with chronic hepatitis C undergoing antiviral therapy. Plos one, 2012;7(10):47715 39 Seeff L.B., Everson G.T., Morgan T.R., et al. Complication rate of percutaneous liver biopsies among persons with advanced chronic liver disease in the HALT-C trial. Clin Gastroenterol Hepatol, 2010; 8(10):877–883.
40 Stotland B.R., Lichtenstein G.R. Liver biopsy complications and routine ultrasound. Am J Gastroenterol, 1996; 91(7):1295–1296.
41 Thampanitchawong P., Piratvisuth T. Liver biopsy:complications and risk factors. World J Gastroenterol. 1999; 5(4):301-304.
42 Regev A., Berho M., Jeffers L.J., et al. Sampling error and intraobserver variation in liver biopsy in patients with chronic HCV infection. Am J Gastroenterol 2002; 97 (10):2614–2618. 43 Goodman Z.D. Grading and staging systems for inflammation and fibrosis in chronic liver diseases. J Hepatol 2007;47(4):598–607.
44 Barr R.G., Ferraioli G., Palmeri M.L., et al. Elastography Assessment of Liver Fibrosis: Society of Radiologists in Ultrasound Consensus Conference Statement. Radiology. 2015; 276(3):845-61.
45 Sporea I., Friedrich-Rust M., Gilja O.H., et al. Liver elastography, EFSUMB Course Book 2018; 15-25.
60 46 Ginat D.T., Destounis S.V., Barr R.G., et al. US elastography of breast and prostate lesions. Radiographics. 2009; 29(7):2007-16.
47 Daniaux M., Auer T., De Zordo T., et al. Strain Elastography of Breast and Prostata Cancer: Similarities and Differences. Rofo. 2016; 188(3):253-8.
48 Toprak N., Toktas O., Ince S., et al. Does ARFI elastography complement B-mode ultrasonography in the radiological diagnosis of idiopathic granulomatous mastitis and invasive ductal carcinoma? Acta Radiologica, 2021. doi:10.1177/0284185120983568
49 Barr R.G. Shear Wave Ultrasound Elastography of the Prostate: Initial Results, Ultrasound Quarterly, 2012; 28(1):13-20
50 Cepeha C.M., Paul C., Borlea A., et al. The Value of Strain Elastography in Predicting Autoimmune Thyroiditis. Diagnostics (Basel), 2020; 10(11):874.
51 Yavuz A., Akbudak İ., Üçler R., et al. Comparison of Efficiencies Between Shear Wave Elastography, Fine-Needle Aspiration Biopsy and American College of Radiology Thyroid Imaging Reporting and Data System Scoring System in Determining the Malignity Potential of Solid Thyroid Nodules. Ultrasound Quarterly. 2020; doi: 10.1097/ruq.0000000000000531. 52 Han D.Y., Sohn Y.M., Seo M., et al. Shear-wave elastography in thyroid ultrasound: Can be a predictor of extrathyroidal extension and cervical lymph node metastasis in papillary thyroid carcinoma? Medicine (Baltimore). 2020; 99(52):23654.
53 Tang X., Wang L., Guo R., et al. Application of ultrasound elastography in the evaluation of muscle strength in a healthy population. Quant Imaging Med Surg. 2020; 10(10):1961- 1972.
54 De Zordo T., Lill S.R., Fink C., et al. Real-time sonoelastography of lateral epicondylitis: comparison of findings between patients and healthy volunteers. AJR Am J Roentgenol. 2009; 193:180–185.
55 Yoshii Y., Tung W.L., Yuine H., et al. Postoperative diagnostic potentials of median nerve strain and applied pressure measurement after carpal tunnel release. BMC Musculoskelet Disord. 2020; 21(1):22.
61 56 Chatziantoniou C., Boffa J.J., Tharaux P.L., et al. Progression and regression in renal vascular and glomerular fibrosis. Int J Exp Pathol 2004; 85:1-11.
57 Ricardo S.D., van Goor H., Eddy A.A. Macrophage diversity in renal injury and repair. J Clin Invest 2008; 118:3522-30.
58 Nankivell B.J., Borrows R.J., Fung C.L., et al. The natural history of chronic allograft nephropathy. N Engl J Med 2003; 349:2326-33.
59 Stegall M.D., Park W.D., Larson T.S., et al. The histology of solitary renal allografts at 1 and 5 years after transplantation. Am J Transplant 2011; 11:698-707.
60 Bavu E., Gennisson J.L., Couade M., et al. Non-invasive in vivo liver fibrosis staging using supersonic shear imaging: a clinical study. Ultrasound Med Biol 2011; 37:1365-73. 61 Grenier N., Gennisson J.L., Cornelis F., et al. Renal ultrasound elastography, Diagnostic and Interventional Imaging, 2013; 94(5):545-550.
62 Yang J.R., La Q., Ding X.M., et al. Using real-time sound touch elastography to monitor changes in transplant kidney elasticity, Clinical Radiology, 2020; 75(12):963.
63 Ercole E., Rigazio C. Role of bowel ultrasound in the management of postoperative Crohn's disease. World J Gastrointest Pathophysiol 2014; 5:457-461.
64 Ripollés T., Muñoz F., Martínez-Pérez M.J., et al. Usefulness of intestinal ultrasound in inflammatory bowel disease. Radiologia, 2020; doi: 10.1016/j.rx.2020.10.001.
65 Allocca M., Fiorino G., Danese S. Cross‐sectional imaging modalities in Crohn's disease. Dig Dis 2013; 31:199-201.
66 Horsthuis K., Bipat S., Bennink R.J., et al. Inflammatory bowel disease diagnosed with
US, MR, scintigraphy, and CT: meta‐analysis of prospective
studies. Radiology 2008; 247:64-79.
67 Moreno N., Ripolles T., Paredes J.M., et al. Usefulness of abdominal ultrasonography in the analysis of endoscopic activity in patients with Crohn's disease: changes following treatment with immunomodulators and/or anti‐TNF antibodies. J Crohns Colitis 2014; 8:1079-1087.
62 68 Dillman J.R., Stidham R.W., Higgins P.D., et al. Ultrasound shear wave elastography helps discriminate low-grade from high-grade bowel wall fibrosis in ex vivo human intestinal specimens. J Ultrasound Med. 2014; 33:2115-2123.
69 Baumgart D.C., Müller H.P., Grittner U., et al. US-based real-time elastography for the detection of fibrotic gut tissue in patients with stricturing Crohn disease. Radiology. 2015; 275:889-899.
70 Rustemovic N., Cukovic-Cavka S., Brinar M. et al. A pilot study of transrectal endoscopic ultrasound elastography in inflammatory bowel disease. BMC Gastroenterol 2011; 11:113. 71 Mazur R., Celmer M., Silicki J., et al. Clinical applications of spleen ultrasound elastography - a review. J Ultrason. 2018; 18(72):37-41.
72 Janik M.K., Kruk B., Szczepankiewicz B., et al. Measurement of liver and spleen stiffness as complementary methods for assessment of liver fibrosis in autoimmune hepatitis. Liver Int. 2020; 00:1– 9.
73 Steer M.L., Waxman I., Freedman S. Chronic pancreatitis. N. Engl. J. Med. 1995; 332:1482-1490.
74 Shimosegawa T., Kataoka K., Kamisawa T. et al. The revised Japanese clinical diagnostic criteria for chronic pancreatitis. J. Gastroenterol. 2010; 45:584-591.
75 Ito T., Ishiguro H., Ohara H. et al. Evidence‐based clinical practice guidelines for chronic pancreatitis J. Gastroenterol. 2016; 51:85-92.
76 Catalano M.F., Sahai A., Levy M. et al. EUS‐based criteria for the diagnosis of chronic pancreatitis: the Rosemont classification. Gastrointest. Endosc. 2009; 69:1251-1261.
77 Stevens T., Lopez R., Adler D.G. et al. Multicenter comparison of the interobserver agreement of standard EUS scoring and Rosemont classification scoring for diagnosis of chronic pancreatitis. Gastrointest. Endosc. 2010; 71:519-526.
78 Trikudanathan G., Vega‐Peralta J., Malli A. et al. Diagnostic performance of endoscopic ultrasound (EUS) for non‐calcific chronic pancreatitis (NCCP) based on histopathology. Am. J. Gastroenterol. 2016; 111:568-574.
63 79 Varadarajulu S., Eltoum I., Tamhane A., et al. Histopathologic correlates of noncalcific chronic pancreatitis by EUS: a prospective tissue characterization study. Gastrointest. Endosc. 2007; 66:501-509.
80 LeBlanc J.K., Chen J.H., Al‐Haddad M. et al. Endoscopic ultrasound and histology in chronic pancreatitis: how are they associated? Pancreas, 2014; 43:440-444.
81 Kuwahara T., Hirooka Y., Kawashima H., et al. Usefulness of shear wave elastography as a quantitative diagnosis of chronic pancreatitis. Journal of Gastroenterology and Hepatology, 2018; 33:756-761.
82 Dietrich C.F., Hocke M. Elastography of the Pancreas, Current View. Clin Endosc. 2019; 52(6):533-540.
83 Pruijssen J.T., De Korte C.L., Voss I., et al. Vascular Shear Wave Elastography in Atherosclerotic Arteries: A Systematic Review, Ultrasound in Medicine & Biology, 2020; 46(9):2145-2163.
84 Freilinger T.M., Schindler A., Schmidt C., et al. Prevalence of nonstenosing, complicated atherosclerotic plaques in cryptogenic stroke JACC Cardiovasc Imaging, 2012; 5:397-405. 85 Léveillé R., Partington B.P., Biller D.S., et al. Complications after ultrasound‐guided biopsy of abdominal structures in dogs and cats: 246 cases (1984–1991). J Am Vet Med Assoc 1993; 203:412-415.
86 Hager D.A., Nyland T.G., Fisher P. Ultrasound‐guided biopsy of the canine liver, kidney and prostate. Vet Radiol 1985; 26:82-88.
87 Watson A.T., Penninck D., Knoll J.S., et al. Safety and correlation of test results of combined ultrasound‐guided fine‐needle aspiration and needle core biopsy of the canine spleen. Vet Radiol Ultrasound 2011; 52:317-322.
88 Alder D., Bass D., Sporri M., et al. Does real-time elastography aid in differentiating canine splenic nodules? Schweiz Arch Tierheilkd 2013; 155:491-496.
89 White J., Gay J., Farnsworth R., et al. Ultrasound elastography of the liver, spleen, and kidneys in clinically normal cats. Vet Radiol Ultrasound 2014; 55:428-434.
64 90 Glińska-Suchocka K., Jankowski M., Kubiak K., et al. Application of shear wave elastography in the diagnosis of mammary gland neoplasm in dogs. Pol J Vet Sci 2012; 16:477-482.
91 Rivero-Juarez A., Morgaz J., Camacho A., et al. Liver stiffness using transient elastography is applicable to canines for hepatic disease models. Plos One 2012; 7:41557. 92 Feliciano M.A.R., Maronezi M.C., Simões A.P.R., et al. Acoustic radiation force impulse elastography of prostate and testes of healthy dogs: preliminary results. J Small Anim Pract, 2015; 56: 320-324.
93 Al-Habib A., Albakr A., Al Towim A., et al. In vivo assessment of spinal cord elasticity using shear wave ultrasound in dogs, Journal of Neurosurgery: Spine SPI, 2018; 29(4):461- 469.
94 Spużak J., Kubiak K., Glińska-Suchocka K., et al. Accuracy of real-time shear wave elastography in the assessment of normal small intestine mucosa in dogs. Pol J Vet Sci.