4. RISULTATI E DISCUSSIONE
4.1 Composti fenolici isolati dall’olio extra-vergine d’oliva modulano
surnatante
Per valutare il potenziale effetto di modulazione dei polifenoli estratti dall’EVOO sull’espressione di miRNA associati all’infiammazione, gli adipociti sono stati pre-
incubati con HT (10 mol/L), OC o OA (25 mol/L) per 6 ore, quindi stimolati con
TNF-α (10 ng/mL) per 18 ore. I miRNA sono stati estratti da adipociti e da esosomi rilasciati nel mezzo di coltura, quindi analizzati mediante real-time qPCR.
In risposta allo stimolo infiammatorio, si osserva una up-regolazione dei livelli di e- spressione del miR-155-5p sia negli adipociti che negli esosomi rispetto al controllo, non trattato con TNF-α. Il pre-trattamento con OC, OA o HT contrasta in maniera si- gnificativa l’aumento dell’espressione del miR-155-5p sia negli adipociti che negli esosomi, rispetto al trattamento con TNF-α (Figura 11A e B).
59
MiR-155-5p è stato uno dei primi miRNA individuati in un contesto infiammatorio, dove risulta essere up-regolato da NF-kB. Il risultato ottenuto concorda con la lette- ratura, in quanto altri lavori hanno documentato la modulazione, in negativo, dell’espressione di miR-155 in seguito a somministrazione, in vitro o in vivo, di so- stanze anti-infiammatorie e antiossidanti, ivi inclusi polifenoli di varia derivazione vegetale. Si osserva una riduzione dei livelli di miRNA associati all’infiammazione, tra cui let-7b e miR-155-3p, in leucociti di soggetti con sindrome metabolica, in se- guito ad un programma dietetico basato sulla dieta mediterranea (di cui l’EVOO è un importante componente alimentare) (Marques-Rocha et al., 2016). L’apigenina (fla- vone presente nel sedano e nel prezzemolo) espleta un’azione anti-infiammatoria a livello polmonare, riducendo in vivo l’espressione LPS-indotta di miR-155 (Arango et al., 2015). Il trattamento di macrofagi murini LPS-stimolati con quercetina (flavo- nolo presente in cipolla, tè, vino rosso, mela) favorisce un’attenuazione dell’espressione di geni infiammatori e una diminuzione dei livelli di miR-155 (Bo-
B
Figura 11: Livelli di espressione del miR-155-5p, estratto da adipociti (A) e da e- sosomi isolati dal surnantante (B), in adipociti umani SGBS di controllo (ctrl), trat-
tati con stimolo pro-infiammatorio (TNF-) e pre-trattati con polifenoli quali oleo-
60
esch-Saadatmandi et al., 2011). Nel tessuto sottocutaneo di individui con
BMI ≥ 25,4 kg/ e con T2DM, si osserva un’espressione significativamente eleva-
ta di miR-155, rispetto a soggetti normopeso e con normale tolleranza al glucosio. Inoltre, tale espressione è risultata essere correlata in maniera significativa con il tas- so di infiltrazione macrofagica, a sua volta positivamente correlata con il grado di in- fiammazione cronica a livello del deposito tissutale in questione. Si conferma pertan- to che il miRNA gioca un ruolo nel stabilire un collegamento tra la disfunzione del tessuto adiposo e lo sviluppo di disordini metabolici obesità-correlati, incluso il T2DM (Klöting et al., 2009). Tili e colleghi evidenziano un possibile meccanismo d’azione epigenetico del resveratrolo (fenolo stilbenico presente nell’uva e nel vino rossi) in un modello di monociti umani (THP-1): il resveratrolo up-regola l’espressione del miR-663, anti-infiammatorio, riducendo i livelli di miR-155 (Tili et al., 2010). In una linea cellulare di macrofagi LPS-stimolati, il trattamento con il po- lifenolo curcumina ha un effetto inibente la produzione di fattori pro-infiammatori e l’espressione di miR-155 (F. Ma et al., 2017).
61
4.2
Composti fenolici isolati dall’olio extra-vergine d’oliva modulano
i livelli di miR-34a-5p negli adipociti e negli esosomi isolati dal
surnatante
In risposta allo stimolo infiammatorio, si osserva una up-regolazione dei livelli di e- spressione del miR-34a-5p sia negli adipociti che negli esosomi, rispetto alle cellule trattate con TNF-α. Il pre-trattamento con OC, OA o HT contrasta in maniera signifi- cativa l’aumento dell’espressione del miR-34a-5p sia negli adipociti che negli eso- somi, rispetto al trattamento con TNF-α (Figura 12A e B).
62
In un contesto infiammatorio, miR-34a risulta essere up-regolato da NF-kB. In uno studio randomizzato controllato con placebo, condotto su uomini ipertesi e con T2DM, si è osservata una modulazione di miRNA coinvolti nella risposta infiamma- toria nel gruppo supplementato con estratto di uva contenente più di 8 mg di resvera- trolo (GE-RES): in particolare, miR-155 e miR-34a risultavano down-regolati in se- guito al trattamento, rispetto al controllo. A questa modulazione, faceva seguito una minore espressione di alcuni marcatori infiammatori (IL-6, fosfatasi alcalina - ALP, IL-1β, CCL3/C-C motif chemokine ligand 3, TNF-α) (Tomé-Carneiro et al., 2013). In un altro lavoro si documenta che il danno epatico arsenico-indotto può essere atte- nuato e migliorato in seguito a somministrazione di estratto di melograno, ricco in antociani, catechine e tannini idrolizzabili: la minore produzione di ROS ha, in vitro, un effetto anti-apoptotico e anti-infiammatorio, grazie ad una minore attivazione dei
pathways p53- e NF-kB-mediati. In questo contesto, miR-34a e Bax (Bcl2 Associated
B
Figura 12: Livelli di espressione del miR-34a-5p, estratto da adipociti (A) e da eso- somi isolati dal surnantante (B), in adipociti umani SGBS di controllo (ctrl), trattati
con stimolo pro-infiammatorio (TNF-) e pre-trattati con polifenoli quali oleocanta-
63
X), fattori pro-apoptotici e pro-infiammatori, nonché target di p53 e NF-kB, risultano
64
4.3
Composti fenolici isolati dall’olio extra-vergine d’oliva modulano
i livelli di let-7c-5p negli adipociti e negli esosomi isolati dal
surnatante
In risposta allo stimolo infiammatorio, si osserva una down-regolazione dei livelli di espressione del miRNA let-7c-5p sia negli adipociti che negli esosomi, rispetto al controllo, non trattato con TNF-α. Il pre-trattamento con OC, OA o HT previene in maniera significativa la minore espressione di let-7c-5p sia negli adipociti che negli esosomi, rispetto al trattamento con TNF-α (Figura 13A e B).
65
In un contesto infiammatorio, let-7c risulta essere down-regolato da NF-kB. È stata documentata un’aumentata espressione di let-7c in linea cellulare di cancro epatico (HepG2) in seguito al trattamento con epigallocatechina 3-gallato (EGCG, polifenolo presente nel tè verde) (Tsang & Kwok, 2010). Nwaeburu e colleghi hanno dimostrato che il trattamento di cellule di adenocarcinoma duttale pancreatico con quercetina porta ad una maggiore espressione cellulare di let-7c (Nwaeburu et al., 2016). L’espressione di let-7 (let-7b, let-7i) risulta essere up-regolata anche da AKBA (a-
cetyl-11-keto-β-boswellic acid), componente attivo presente negli acidi boswellici
della resina gommifera di Boswellia serrata, i quali hanno riconosciute proprietà an- ti-infiammatorie (Shah et al., 2009).
B
Figura 13: Livelli di espressione del let-7c-5p, estratto da adipociti (A) e da eso- somi isolati dal surnantante (B), in adipociti umani SGBS di controllo (ctrl), trattati
con stimolo pro-infiammatorio (TNF-) e pre-trattati con polifenoli quali oleocan-
66
5. CONCLUSIONI
Il trattamento di adipociti umani, infiammati, con i polifenoli OC, OA e HT si è di- mostrato valido nel contrastare l’alterata espressione di miR-155-5p, miR-34a-5p e let-7c-5p, indotta dall’esposizione degli adipociti al TNF-α. Tale evidenza è stata ot- tenuta sia negli stessi adipociti che nella frazione extracellulare costituita da esosomi. Poiché gli esosomi partecipano alla comunicazione cell-to-cell, e sono in grado di at- traversare la parete dei capillari per essere internalizzati da una cellula ricevente, la diversa espressione esosomiale dei miRNA dopo il trattamento pro-infiammatorio potrebbe verosimilmente avere un impatto anche in tessuti distanti da quello adiposo. L’aver evidenziato che il trattamento con i componenti dell’EVOO risulta favorevole a migliorare questo aspetto dell’infiammazione ha pertanto grande rilevanza nell’ambito di un approccio a livello sistemico.
Rimangono inesplorati gli effetti dei polifenoli sulla modulazione di miRNA in studi clinici sull’uomo, che potrebbero rappresentare un ulteriore approfondimento in que- sto ambito di ricerca.
67
6. BIBLIOGRAFIA
Ahima, R. S. (2006). Adipose Tissue as an Endocrine Organ. Obesity, 14, 242S- 249S. https://doi.org/10.1038/oby.2006.317
Arango, D., Diosa-Toro, M., Rojas-Hernandez, L. S., Cooperstone, J. L., Schwartz, S. J., Mo, X., Jiang, J., Schmittgen, T. D., & Doseff, A. I. (2015). Dietary api- genin reduces LPS-induced expression of miR-155 restoring immune balance during inflammation. Molecular Nutrition & Food Research, 59(4), 763–772. https://doi.org/10.1002/mnfr.201400705
Ardekani, A. M., & Naeini, M. M. (2010). The Role of MicroRNAs in Human Dise- ases. Avicenna Journal of Medical Biotechnology, 2(4), 161–179.
Arner, P., & Kulyté, A. (2015). MicroRNA regulatory networks in human adipose tis- sue and obesity. Nature Reviews Endocrinology, 11(5), 276–288. https://doi.org/10.1038/nrendo.2015.25
Baker, R. G., Hayden, M. S., & Ghosh, S. (2011). NF-κB, Inflammation, and Meta-
bolic Disease. Cell Metabolism, 13(1), 11–22.
https://doi.org/10.1016/j.cmet.2010.12.008
Barness, L. A., Opitz, J. M., & Gilbert-Barness, E. (2007). Obesity: Genetic, molecu- lar, and environmental aspects. American Journal of Medical Genetics Part
A, 143A(24), 3016–3034. https://doi.org/10.1002/ajmg.a.32035
Bastien, M., Poirier, P., Lemieux, I., & Després, J.-P. (2014). Overview of Epidemio- logy and Contribution of Obesity to Cardiovascular Disease. Progress in
Cardiovascular Diseases, 56(4), 369–381. https://doi.org/10.1016/j.pcad.2013.10.016
68
Beauchamp, G. K., Keast, R. S. J., Morel, D., Lin, J., Pika, J., Han, Q., Lee, C.-H., Smith, A. B., & Breslin, P. A. S. (2005). Ibuprofen-like activity in extra-virgin olive oil. Nature, 437(7055), 45–46. https://doi.org/10.1038/437045a
Bladé, C., Baselga-Escudero, L., Salvadó, M. J., & Arola-Arnal, A. (2013). MiRNAs, polyphenols, and chronic disease. Molecular Nutrition & Food Research,
57(1), 58–70. https://doi.org/10.1002/mnfr.201200454
Blüher, M. (2013). Adipose tissue dysfunction contributes to obesity related metabo- lic diseases. Best Practice & Research Clinical Endocrinology & Metabo-
lism, 27(2), 163–177. https://doi.org/10.1016/j.beem.2013.02.005
Bluher, M. (2016). Adipose tissue inflammation: A cause or consequence of obesity- related insulin resistance? Clinical Science, 130(18), 1603–1614. https://doi.org/10.1042/CS20160005
Blüher, M., & Mantzoros, C. S. (2015). From leptin to other adipokines in health and disease: Facts and expectations at the beginning of the 21st century. Metabo-
lism, 64(1), 131–145. https://doi.org/10.1016/j.metabol.2014.10.016
Boesch-Saadatmandi, C., Loboda, A., Wagner, A. E., Stachurska, A., Jozkowicz, A., Dulak, J., Döring, F., Wolffram, S., & Rimbach, G. (2011). Effect of quercetin and its metabolites isorhamnetin and quercetin-3-glucuronide on inflamma- tory gene expression: Role of miR-155☆. The Journal of Nutritional Bio-
chemistry, 22(3), 293–299. https://doi.org/10.1016/j.jnutbio.2010.02.008
Bohnsack, M. T. (2004). Exportin 5 is a RanGTP-dependent dsRNA-binding protein that mediates nuclear export of pre-miRNAs. RNA, 10(2), 185–191. https://doi.org/10.1261/rna.5167604
69
Boldin, M. P., & Baltimore, D. (2012). MicroRNAs, new effectors and regulators of NF-κB: MicroRNAs of the NF-κB network. Immunological Reviews, 246(1), 205–220. https://doi.org/10.1111/j.1600-065X.2011.01089.x
Booth, A. M., Fang, Y., Fallon, J. K., Yang, J.-M., Hildreth, J. E. K., & Gould, S. J. (2006). Exosomes and HIV Gag bud from endosome-like domains of the T cell plasma membrane. The Journal of Cell Biology, 172(6), 923–935. https://doi.org/10.1083/jcb.200508014
Calin, G. A., Dumitru, C. D., Shimizu, M., Bichi, R., Zupo, S., Noch, E., Aldler, H., Rattan, S., Keating, M., Rai, K., Rassenti, L., Kipps, T., Negrini, M., Bullrich, F., & Croce, C. M. (2002). Nonlinear partial differential equations and appli- cations: Frequent deletions and down-regulation of micro- RNA genes miR15 and miR16 at 13q14 in chronic lymphocytic leukemia. Proceedings of the
National Academy of Sciences, 99(24), 15524–15529. https://doi.org/10.1073/pnas.242606799
Chen, L., Zheng, S.-Y., Yang, C.-Q., Ma, B.-M., & Jiang, D. (2019). MiR-155-5p in- hibits the proliferation and migration of VSMCs and HUVECs in atheroscle- rosis by targeting AKT1. European Review for Medical and Pharmacological
Sciences, 23(5), 2223–2233. https://doi.org/10.26355/eurrev_201903_17270
Chen, X., Liang, H., Zhang, J., Zen, K., & Zhang, C.-Y. (2012). Secreted microR- NAs: A new form of intercellular communication. Trends in Cell Biology,
22(3), 125–132. https://doi.org/10.1016/j.tcb.2011.12.001
Cheng, L., Sharples, R. A., Scicluna, B. J., & Hill, A. F. (2014). Exosomes provide a protective and enriched source of miRNA for biomarker profiling compared to intracellular and cell-free blood. Journal of Extracellular Vesicles, 3(1), 23743. https://doi.org/10.3402/jev.v3.23743
70
Choudhury, S., Ghosh, S., Mukherjee, S., Gupta, P., Bhattacharya, S., Adhikary, A., & Chattopadhyay, S. (2016). Pomegranate protects against arsenic-induced p53-dependent ROS-mediated inflammation and apoptosis in liver cells. The
Journal of Nutritional Biochemistry, 38, 25–40. https://doi.org/10.1016/j.jnutbio.2016.09.001
Cinti, S. (2012). The adipose organ at a glance. Disease Models & Mechanisms, 5(5), 588–594. https://doi.org/10.1242/dmm.009662
Corella, D., & Ordovás, J. M. (2014). How does the Mediterranean diet promote car- diovascular health? Current progress toward molecular mechanisms: Gene- diet interactions at the genomic, transcriptomic, and epigenomic levels provi- de novel insights into new mechanisms. BioEssays, 36(5), 526–537. https://doi.org/10.1002/bies.201300180
Corrêa, T. A., & Rogero, M. M. (2019). Polyphenols regulating microRNAs and in-
flammation biomarkers in obesity. Nutrition, 59, 150–157.
https://doi.org/10.1016/j.nut.2018.08.010
D’Amore, S., Vacca, M., Cariello, M., Graziano, G., D’Orazio, A., Salvia, R., Sasso, R. C., Sabbà, C., Palasciano, G., & Moschetta, A. (2016). Genes and miRNA expression signatures in peripheral blood mononuclear cells in healthy su- bjects and patients with metabolic syndrome after acute intake of extra virgin olive oil. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Molecular and Cell Biology
of Lipids, 1861(11), 1671–1680. https://doi.org/10.1016/j.bbalip.2016.07.003
Esau, C., Kang, X., Peralta, E., Hanson, E., Marcusson, E. G., Ravichandran, L. V., Sun, Y., Koo, S., Perera, R. J., Jain, R., Dean, N. M., Freier, S. M., Bennett, C. F., Lollo, B., & Griffey, R. (2004). MicroRNA-143 Regulates Adipocyte
71
Differentiation. Journal of Biological Chemistry, 279(50), 52361–52365. https://doi.org/10.1074/jbc.C400438200
Fabbri, M., Paone, A., Calore, F., Galli, R., Gaudio, E., Santhanam, R., Lovat, F., Fadda, P., Mao, C., Nuovo, G. J., Zanesi, N., Crawford, M., Ozer, G. H., Wernicke, D., Alder, H., Caligiuri, M. A., Nana-Sinkam, P., Perrotti, D., & Croce, C. M. (2012). MicroRNAs bind to Toll-like receptors to induce pro- metastatic inflammatory response. Proceedings of the National Academy of
Sciences, 109(31), E2110–E2116. https://doi.org/10.1073/pnas.1209414109
Faraoni, I., Antonetti, F. R., Cardone, J., & Bonmassar, E. (2009). miR-155 gene: A typical multifunctional microRNA. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) -
Molecular Basis of Disease, 1792(6), 497–505. https://doi.org/10.1016/j.bbadis.2009.02.013
Fernández-Mar, M. I., Mateos, R., García-Parrilla, M. C., Puertas, B., & Cantos- Villar, E. (2012). Bioactive compounds in wine: Resveratrol, hydroxytyrosol
and melatonin: A review. Food Chemistry, 130(4), 797–813.
https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2011.08.023
Filipek, A., Czerwińska, M. E., Kiss, A. K., Wrzosek, M., & Naruszewicz, M. (2015). Oleacein enhances anti-inflammatory activity of human macrophages by increasing CD163 receptor expression. Phytomedicine, 22(14), 1255– 1261. https://doi.org/10.1016/j.phymed.2015.10.005
Flegal, K. M., Kit, B. K., Orpana, H., & Graubard, B. I. (2013). Association of All- Cause Mortality With Overweight and Obesity Using Standard Body Mass Index Categories: A Systematic Review and Meta-analysis. JAMA, 309(1), 71. https://doi.org/10.1001/jama.2012.113905
72
Francisco, V., Ruiz-Fernández, C., Lahera, V., Lago, F., Pino, J., Skaltsounis, L., González-Gay, M. A., Mobasheri, A., Gómez, R., Scotece, M., & Gualillo, O. (2019). Natural Molecules for Healthy Lifestyles: Oleocanthal from Extra Virgin Olive Oil. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 67(14), 3845– 3853. https://doi.org/10.1021/acs.jafc.8b06723
Friedman, R. C., Farh, K. K.-H., Burge, C. B., & Bartel, D. P. (2008). Most mamma- lian mRNAs are conserved targets of microRNAs. Genome Research, 19(1), 92–105. https://doi.org/10.1101/gr.082701.108
Frost, R. J. A., & Olson, E. N. (2011). Control of glucose homeostasis and insulin sensitivity by the Let-7 family of microRNAs. Proceedings of the National
Academy of Sciences, 108(52), 21075–21080. https://doi.org/10.1073/pnas.1118922109
Gaudet, A. D., Fonken, L. K., Gushchina, L. V., Aubrecht, T. G., Maurya, S. K., Pe- riasamy, M., Nelson, R. J., & Popovich, P. G. (2016). MiR-155 Deletion in Female Mice Prevents Diet-Induced Obesity. Scientific Reports, 6(1), 22862. https://doi.org/10.1038/srep22862
Gealekman, O., Guseva, N., Hartigan, C., Apotheker, S., Gorgoglione, M., Gurav, K., Tran, K.-V., Straubhaar, J., Nicoloro, S., Czech, M. P., Thompson, M., Peru- gini, R. A., & Corvera, S. (2011). Depot-Specific Differences and Insufficient Subcutaneous Adipose Tissue Angiogenesis in Human Obesity. Circulation,
123(2), 186–194. https://doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.110.970145
Grishok, A., Pasquinelli, A. E., Conte, D., Li, N., Parrish, S., Ha, I., Baillie, D. L., Fi- re, A., Ruvkun, G., & Mello, C. C. (2001). Genes and Mechanisms Related to RNA Interference Regulate Expression of the Small Temporal RNAs that
73
Control C. elegans Developmental Timing. Cell, 106(1), 23–34. https://doi.org/10.1016/S0092-8674(01)00431-7
Gupta, S. K., Bang, C., & Thum, T. (2010). Circulating MicroRNAs as Biomarkers and Potential Paracrine Mediators of Cardiovascular Disease. Circulation:
Cardiovascular Genetics, 3(5), 484–488. https://doi.org/10.1161/CIRCGENETICS.110.958363
Ha, M., & Kim, V. N. (2014). Regulation of microRNA biogenesis. Nature Reviews
Molecular Cell Biology, 15(8), 509–524. https://doi.org/10.1038/nrm3838
Haase, J., Weyer, U., Immig, K., Klöting, N., Blüher, M., Eilers, J., Bechmann, I., & Gericke, M. (2014). Local proliferation of macrophages in adipose tissue du-
ring obesity-induced inflammation. Diabetologia, 57(3), 562–571.
https://doi.org/10.1007/s00125-013-3139-y
Hajer, G. R., van Haeften, T. W., & Visseren, F. L. J. (2008). Adipose tissue dysfun- ction in obesity, diabetes, and vascular diseases. European Heart Journal,
29(24), 2959–2971. https://doi.org/10.1093/eurheartj/ehn387
Hao, J., Shen, W., Yu, G., Jia, H., Li, X., Feng, Z., Wang, Y., Weber, P., Wertz, K., & Sharman, E. (2010). Hydroxytyrosol promotes mitochondrial biogenesis and mitochondrial function in 3T3-L1 adipocytes. The Journal of Nutritional Bio-
chemistry, 21(7), 634–644. https://doi.org/10.1016/j.jnutbio.2009.03.012
Hepler, C., & Gupta, R. K. (2017). The expanding problem of adipose depot remode- ling and postnatal adipocyte progenitor recruitment. Molecular and Cellular
Endocrinology, 445, 95–108. https://doi.org/10.1016/j.mce.2016.10.011
Hesse, M., & Arenz, C. (2014). MicroRNA Maturation and Human Disease. In C. Arenz (A c. Di), MiRNA Maturation (Vol. 1095, pagg. 11–25). Humana Press. https://doi.org/10.1007/978-1-62703-703-7_2
74
Hoesel, B., & Schmid, J. A. (2013). The complexity of NF-κB signaling in inflam-
mation and cancer. Molecular Cancer, 12(1), 86.
https://doi.org/10.1186/1476-4598-12-86
H.R. Vasanthi, N. ShriShriMal, & D.K. Das. (2012). Phytochemicals from Plants to Combat Cardiovascular Disease. Current Medicinal Chemistry, 19(14), 2242–2251. https://doi.org/10.2174/092986712800229078
Hsieh, C.-H., Rau, C.-S., Wu, S.-C., Yang, J. C.-S., Wu, Y.-C., Lu, T.-H., Tzeng, S.- L., Wu, C.-J., & Lin, C.-W. (2015). Weight-reduction through a low-fat diet causes differential expression of circulating microRNAs in obese C57BL/6 mice. BMC Genomics, 16(1), 699. https://doi.org/10.1186/s12864-015-1896-3 Iacono, A., Gómez, R., Sperry, J., Conde, J., Bianco, G., Meli, R., Gómez-Reino, J. J., Smith, A. B., & Gualillo, O. (2010). Effect of oleocanthal and its derivati- ves on inflammatory response induced by lipopolysaccharide in a murine chondrocyte cell line. Arthritis & Rheumatism, 62(6), 1675–1682. https://doi.org/10.1002/art.27437
Iftikhar, H., & Carney, G. E. (2016). Evidence and potential in vivo functions for bio- fluid miRNAs: From expression profiling to functional testing: Potential roles of extracellular miRNAs as indicators of physiological change and as agents of intercellular information exchange. BioEssays, 38(4), 367–378. https://doi.org/10.1002/bies.201500130
Iliopoulos, D., Hirsch, H. A., & Struhl, K. (2009). An Epigenetic Switch Involving NF-κB, Lin28, Let-7 MicroRNA, and IL6 Links Inflammation to Cell Tran- sformation. Cell, 139(4), 693–706. https://doi.org/10.1016/j.cell.2009.10.014 Jiang, P., Liu, R., Zheng, Y., Liu, X., Chang, L., Xiong, S., & Chu, Y. (2012). MiR-
75
geting Notch1 in murine macrophages. Experimental Cell Research, 318(10), 1175–1184. https://doi.org/10.1016/j.yexcr.2012.03.018
Jonas, S., & Izaurralde, E. (2015). Towards a molecular understanding of microR- NA-mediated gene silencing. Nature Reviews Genetics, 16(7), 421–433. https://doi.org/10.1038/nrg3965
Karkeni, E., Astier, J., Tourniaire, F., El Abed, M., Romier, B., Gouranton, E., Wan, L., Borel, P., Salles, J., Walrand, S., Ye, J., & Landrier, J.-F. (2016). Obesity- associated Inflammation Induces microRNA-155 Expression in Adipocytes and Adipose Tissue: Outcome on Adipocyte Function. The Journal of Clinical
Endocrinology & Metabolism, 101(4), 1615–1626. https://doi.org/10.1210/jc.2015-3410
Kim, K. M., Abdelmohsen, K., Mustapic, M., Kapogiannis, D., & Gorospe, M. (2017). RNA in extracellular vesicles: RNA in extracellular vesicles. Wiley
Interdisciplinary Reviews: RNA, 8(4), e1413. https://doi.org/10.1002/wrna.1413
Klöting, N., Berthold, S., Kovacs, P., Schön, M. R., Fasshauer, M., Ruschke, K., Stumvoll, M., & Blüher, M. (2009). MicroRNA Expression in Human Omen- tal and Subcutaneous Adipose Tissue. PLoS ONE, 4(3), e4699. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0004699
Klöting, N., Fasshauer, M., Dietrich, A., Kovacs, P., Schön, M. R., Kern, M., Stum- voll, M., & Blüher, M. (2010). Insulin-sensitive obesity. American Journal of
Physiology-Endocrinology and Metabolism, 299(3), E506–E515. https://doi.org/10.1152/ajpendo.00586.2009
Kurowska-Stolarska, M., Alivernini, S., Ballantine, L. E., Asquith, D. L., Millar, N. L., Gilchrist, D. S., Reilly, J., Ierna, M., Fraser, A. R., Stolarski, B.,
76
McSharry, C., Hueber, A. J., Baxter, D., Hunter, J., Gay, S., Liew, F. Y., & McInnes, I. B. (2011). MicroRNA-155 as a proinflammatory regulator in cli- nical and experimental arthritis. Proceedings of the National Academy of
Sciences, 108(27), 11193–11198. https://doi.org/10.1073/pnas.1019536108
Kurowska-Stolarska, Mariola, Alivernini, S., Melchor, E. G., Elmesmari, A., Tolusso, B., Tange, C., Petricca, L., Gilchrist, D. S., Di Sante, G., Keijzer, C., Stewart, L., Di Mario, C., Morrison, V., Brewer, J. M., Porter, D., Milling, S., Baxter, R. D., McCarey, D., Gremese, E., … McInnes, I. B. (2017). MicroRNA-34a dependent regulation of AXL controls the activation of dendritic cells in in-
flammatory arthritis. Nature Communications, 8(1), 15877.
https://doi.org/10.1038/ncomms15877
Lagos-Quintana, M. (2001). Identification of Novel Genes Coding for Small Expres-
sed RNAs. Science, 294(5543), 853–858.
https://doi.org/10.1126/science.1064921
Landrier, J.-F., Derghal, A., & Mounien, L. (2019). MicroRNAs in Obesity and Rela-
ted Metabolic Disorders. Cells, 8(8), 859.
https://doi.org/10.3390/cells8080859
Lavery, C. A., Kurowska-Stolarska, M., Holmes, W. M., Donnelly, I., Caslake, M., Collier, A., Baker, A. H., & Miller, A. M. (2016). miR-34a −/− mice are su-
sceptible to diet-induced obesity: MiR-34a −/− Mice are Susceptible to Obe-
sity. Obesity, 24(8), 1741–1751. https://doi.org/10.1002/oby.21561
Lavie, P., Herer, P., & Lavie, L. (2007). Mortality risk factors in sleep apnoea: A ma- tched case?control study. Journal of Sleep Research, 16(1), 128–134. https://doi.org/10.1111/j.1365-2869.2007.00578.x
77
Lee, R. C., Feinbaum, R. L., & Ambros, V. (1993). The C. elegans heterochronic ge- ne lin-4 encodes small RNAs with antisense complementarity to lin-14. Cell,
75(5), 843–854. https://doi.org/10.1016/0092-8674(93)90529-Y
Lee, Y. (2002). MicroRNA maturation: Stepwise processing and subcellular localiza-
tion. The EMBO Journal, 21(17), 4663–4670.
https://doi.org/10.1093/emboj/cdf476
Lee, Yoontae, Ahn, C., Han, J., Choi, H., Kim, J., Yim, J., Lee, J., Provost, P., Råd- mark, O., Kim, S., & Kim, V. N. (2003). The nuclear RNase III Drosha initia-
tes microRNA processing. Nature, 425(6956), 415–419.
https://doi.org/10.1038/nature01957
Lepore, Maggisano, Bulotta, Mignogna, Arcidiacono, Procopio, Brunetti, Russo, & Celano. (2019). Oleacein Prevents High Fat Diet-Induced A Diposity and Ameliorates Some Biochemical Parameters of Insulin Sensitivity in Mice.
Nutrients, 11(8), 1829. https://doi.org/10.3390/nu11081829
Lewis, B. P., Shih, I., Jones-Rhoades, M. W., Bartel, D. P., & Burge, C. B. (2003). Prediction of Mammalian MicroRNA Targets. Cell, 115(7), 787–798. https://doi.org/10.1016/S0092-8674(03)01018-3
Li, J., Wang, K., Chen, X., Meng, H., Song, M., Wang, Y., Xu, X., & Bai, Y. (2012). Transcriptional activation of microRNA-34a by NF-kappa B in human eso-
phageal cancer cells. BMC Molecular Biology, 13(1), 4.
https://doi.org/10.1186/1471-2199-13-4
Liu, T., Zhang, L., Joo, D., & Sun, S.-C. (2017). NF-κB signaling in inflammation.
Signal Transduction and Targeted Therapy, 2(1), 17023. https://doi.org/10.1038/sigtrans.2017.23
78
Lo Cicero, A., Stahl, P. D., & Raposo, G. (2015). Extracellular vesicles shuffling in- tercellular messages: For good or for bad. Current Opinion in Cell Biology,
35, 69–77. https://doi.org/10.1016/j.ceb.2015.04.013
Lobb, R. J., Becker, M., Wen Wen, S., Wong, C. S. F., Wiegmans, A. P., Leimgruber, A., & Möller, A. (2015). Optimized exosome isolation protocol for cell cultu- re supernatant and human plasma. Journal of Extracellular Vesicles, 4(1), 27031. https://doi.org/10.3402/jev.v4.27031
Lombardo, G. E., Lepore, S. M., Morittu, V. M., Arcidiacono, B., Colica, C., Proco- pio, A., Maggisano, V., Bulotta, S., Costa, N., Mignogna, C., Britti, D., Bru- netti, A., Russo, D., & Celano, M. (2018). Effects of Oleacein on High-Fat Diet-Dependent Steatosis, Weight Gain, and Insulin Resistance in Mice.
Frontiers in Endocrinology, 9, 116. https://doi.org/10.3389/fendo.2018.00116
Lumeng, C. N., Bodzin, J. L., & Saltiel, A. R. (2007). Obesity induces a phenotypic switch in adipose tissue macrophage polarization. Journal of Clinical Investi-