Rezultatų apibendrinimas

Vytelinių eukaliptų (Eucalyptus viminalis L.) mėginiuose nustatytas didžiausias kiekis fenolinių junginių, flavonoidų bei hidroksicinamono rūgšties darinių. Kokybinio fenolinių junginių tyrimo metu nustatyta chlorogeno rūgštis, hiperozidas, izokvercitrinas, avikularinas, astragalinas, kvercitrinas, kemferol-3-gliukuronidas ir kvercetinas. Kiekybinės fenolinių junginių analizės metu nustatyta, kad chlorogeno rūgštis vyrauja rutulinių eukaliptų (Eucalyptus globulus L.) ir vytelinių eukaliptų (Eucalyptus viminalis L.) žaliavų ekstraktuose. Kokybinės eukaliptų lapų eterinio aliejaus analizės metu identifikuotas α-pinenas, 1,8-cineolis, α-terpinilacetatas, aromadendrenas ir globulolis. Kiekybiškai ištyrus eukaliptų lapų eterinį aliejų, nustatyta, kad didžiausias 1,8-cineolio kiekis identifikuotas vytelinių eukaliptų (Eucalyptus viminalis L.) lapų eterinio aliejaus mėginyje, kurio žaliava įsigyta Lenkijoje.

IŠVADOS

1. Ištyrus bendro fenolinių junginių kiekio įvairavimą eukaliptų lapų ekstraktuose nustatyta, kad fenolinių junginių kiekis rutulinių eukaliptų (E. globulus L.) lapų mėginiuose įvairuoja nuo 74,62 mg/g iki 89,98 mg/g, o vytelinių eukaliptų (E. viminalis L.) – nuo 72,48 mg/g iki 99,44 mg/g. Didžiausias šių junginių kiekis nustatytas vytelinių eukaliptų žaliavos mėginyje (99,44 mg/g), kuris įsigytas Rusijos rinkoje.

2. Atlikus bendro flavonoidų kiekio tyrimą nustatyta, kad didžiausias šių junginių kiekis yra Lietuvos rinkoje įsigytame vytelinių eukaliptų (E. viminalis L.) lapų mėginyje (22,15 mg/g), tuo tarpu mažiausias - rutulinių eukaliptų (E. globulus L.) mėginyje (7,93 mg/g), kuris įsigytas Ispanijoje.

3. Įvertinus hidroksicinamono rūgšties darinių kiekį eukaliptų lapų ekstraktuose nustatyta, kad jų kiekis varijuoja nuo 29,2 mg/g iki 52,5 mg/g. Baltarusijos rinkoje įsigytame vytelinių eukaliptų (E. viminalis L.) lapų žaliavoje nustatytas didžiausias (52,5 mg/g) hidroksicinamono rūgšties darinių kiekis, tuo tarpu mažiausias – Lietuvoje įsigytame vytelinių eukaliptų (E. viminalis L.) lapų ėminyje (29,2 mg/g).

4. Taikant efektyviosios skysčių chromatografijos metodą, eukaliptų lapų ekstraktuose įvertinta fenolinių junginių kokybinė bei kiekybinė sudėtis. Tirtuose mėginiuose identifikuoti 8 junginiai: chlorogeno rūgštis, hiperozidas, izokvercitrinas, avikularinas, astragalinas, kvercitrinas, kemferol-3-gliukuronidas ir kvercetinas. Nustatyta, kad tirtuose rutulinių eukaliptų (E. globulus L.) ir vytelinių eukaliptų (E. viminalis L.) lapų mėginiuose dominuoja chlorogeno rūgštis (5341-14989 µg/g). Didžiausias jos kiekis (14989 µg/g) nustatytas vytelinių eukaliptų (E. viminalis L.) lapų mėginyje, kuris įsigytas Baltarusijos rinkoje. Didžiausias kvercitrino kiekis nustatytas vytelinių eukaliptų žaliavos mėginyje (30 µg/g), kuris įsigytas Lenkijoje. Daugiausiai kemferol-3-gliukuronido nustatyta vytelinių eukaliptų (E. viminalis L.) žaliavos mėginyje (9005 µg/g), kuris įsigytas Baltarusijoje. Didžiausi hiperozido ir avikularino kiekiai nustatyti rutulinių eukaliptų mėginyje (92 µg/g; 86 µg/g atitinkamai).

5. Įvertinus eukaliptų lapų ekstraktų antioksidantinį aktyvumą, stipriausiu antiradikaliniu aktyvumu pasižymi vytelinių eukaliptų (E. viminalis L.) lapų ekstraktas (223,82mg TE_ABTS/g, 150,45 mg TE_DPPH/g), kurio žaliava įsigyta Ispanijoje. Didžiausiu redukciniu aktyvumu pasižymi rutulinių eukaliptų (E. globulus L.) lapų mėginys (455,27 mg TEFRAP/g), kurio žaliava įsigyta Norvegijos rinkoje.

6. Dujų chromatografijos metodu įvertinta kokybinė ir kiekybinė eukaliptų lapų ėminių eterinio aliejaus sudėtis. Visuose tirtuose eukaliptų žaliavų eteriniuose aliejuose nustatyti 5

junginiai: α-pinenas, 1,8-cineolis, α-terpinilacetatas, aromadendrenas bei globulolis. Nustatyta, kad 1,8-cineolio kiekis rutulinių ir vytelinių eukaliptų lapų ėminių eteriniuose aliejuose varijuoja nuo 258 µg/ml iki 23707 µg/ml. Didžiausias kiekis nustatytas vytelinių eukaliptų (E. viminalis L.) lapų žaliavos eteriniame aliejuje, kuris įsigytas Lenkijos rinkoje (23707 µg/g).

PRAKTINĖS REKOMENDACIJOS

1. Išanalizavus tyrimo rezultatus rekomenduojame medicininiams tikslams įsigyti rutulinių eukaliptų (E. globulus L.) ir vytelinių eukaliptų (E. viminalis L.) lapų žaliavą Rusijos, Ispanijos, Lietuvos, Baltarusijos, Lenkijos ir Norvegijos vaistinėse.

2. Ligų gydymui ir jų prevencijai rekomenduojame eukaliptų lapų vaistinę augalinę žaliavą įsigyti vaistinėse, kadangi jose parduodama vaistinė augalinė žaliava atitinkanti Europos farmakopėjos reikalavimus.

3. Remiantis mūsų tyrimo duomenimis nustatyta, kad vytelinių eukaliptų lapų žaliavos mėginių ekstraktai pasižymi stipriau išreikštu antioksidantiniu aktyvumu. Vytelinių eukaliptų augalinė žaliava sukaupia didesnį fenolinių junginių, flavonoidų ir hidroksicinamono rūgšties darinių kiekį nei rutulinių eukaliptų lapų mėginiai, todėl medicinos praktikoje rekomenduojame vartoti vytelinių eukaliptų lapų žaliavą.

4. Atliktų tyrimų duomenys leidžia spręsti apie galimybes eukaliptų lapų augalinę žaliavą panaudoti kuriant, vystant naujus ir tobulinant jau esamus augalinius maisto papildus bei vaistinius preparatus, kurių sudėtyje yra ši žaliava. Skirtingų rūšių augalų žaliavos tyrimų duomenys yra ypač svarbūs didinant gydymui ir ligų prevencijai naudojamų rūšių įvairovę.

LITERATŪROS SĄRAŠAS

1. Bent S. Herbal medicine in the United States: Review of efficacy, safety, and regulation - Grand Rounds at University of California, San Francisco Medical Center. J Gen Intern Med.

2008;23(6):854–9.

2. World Health Organisation (WHO). WHO Traditional Medicine Strategy 2014-2023. World Heal Organ [Internet]. 2013;1–76. Available from:

http://apps.who.int/iris/bitstream/10665/92455/1/9789241506090_eng.pdf?ua=1 (Accessed 09.09.2016)

3. Bayala B, Bassole IHN, Gnoula C, Nebie R, Yonli A, Morel L, et al. Chemical composition, antioxidant, anti-inflammatory and anti-proliferative activities of essential oils of plants from Burkina Faso. PLoS One. 2014;9(3):1–11.

4. Huang HC, Ho YC, Lim JM, Chang TY, Ho CL, Chang TM. Investigation of the

anti-melanogenic and antioxidant characteristics of Eucalyptus camaldulensis flower essential oil and determination of its chemical composition. Int J Mol Sci. 2015;16(5):10470–90.

5. Guillén A, Granados S, Rivas KE, Estrada O, Echeverri LF, Balcázar N. Antihyperglycemic activity of eucalyptus tereticornis in insulin-resistant cells and a nutritional model of diabetic mice. Adv Pharmacol Sci. 2015;2015.

6. Milne LA, Martin ARH. Australian systematic botany society. Aust Syst Bot. 1998;11:503–52.

7. Silberloff, Daniel; Rejmanek Ma. Encyclopedia of Biological Invasions. 2011.

8. Ali I, Abbas SQ, Hameed M, Naz N, Zafar S, Kanwal S. Leaf anatomical adaptation in some exotic species of Eucalyptus (Myrtaceae). Pak J Bot. 2009;41(6):2717–27.

9. МАКАРОВА АЛЁНА СЕРГЕЕВНА. СОВЕРШЕНСТВОВАНИЕ МЕТОДОВ

СТАНДАРТИЗАЦИИ И РАЗРАБОТКА АНТИМИКРОБНЫХ ПРЕПАРАТОВ ЭВКАЛИПТА ПРУТОВИДНОГО, ШАЛФЕЯ ЛЕКАРСТВЕННОГО И ЗВЕРОБОЯ ПРОДЫРЯВЛЕННОГО. 2015;181.

tree Ref Sel Guid [Internet]. 2009;0:1–5. Available from:

http://www.worldagroforestry.org/sites/treedbs/treedatabases.asp

11. Names L, Description B. Eucalyptus globulus ssp . globulus Labill . 2009;0:1–5.

12. Council of Europe. The European Pharmacopoeia 8th (Ph.Eur.). Vol. 1, Medicina nei secoli. 2014. 1295 p.

13. Rule K. Six new infraspecific taxa in Eucalyptus ( Myrtaceae ) for Victoria. (2011):3–15.

14. Liu H, Li J. The Study of the Ecological Problems of Eucalyptus Plantation. J Sustain Dev [Internet]. 2010;3(1):197. Available from:

http://www.ccsenet.org/journal/index.php/jsd/article/view/5363/4477

15. Shayoub MEH, Dawoud ADH, Abdelmageed MAM, Ehassan AM, Ehassan AM.

Phytochemical analysis of leaves extract of Eucalyptus camaldulensis Dehnh. Omdurman J Pharm Sci. 2015;2(1):64–71.

16. Ishnava KB, Chauhan JB, Barad MB. Anticariogenic and phytochemical evaluation of Eucalyptus globules Labill. Saudi J Biol Sci [Internet]. 2013;20(1):69–74. Available from: http://dx.doi.org/10.1016/j.sjbs.2012.11.003

17. Maghsoodlou MT, Kazemipoor N, Valizadeh J, Falak Nezhad Seifi M, Rahneshan N. Essential oil composition of Eucalyptus microtheca and Eucalyptus viminalis. Avicenna J Phytomedicine. 2015;5(6):540–52.

18. Brasileira S, Tropical DM, Baptista EB, Zimmermann-franco DC, Augusto A, Lataliza B, et al. Major Article Chemical composition and antifungal activity of essential oil from Eucalyptus smithii against dermatophytes. Rev Soc Bras Med Trop. 2015;48(September):746–52.

19. Sebei K, Sakouhi F, Herchi W, Khouja ML, Boukhchina S. Chemical composition and

antibacterial activities of seven Eucalyptus species essential oils leaves. Biol Res. 2015;48:1–5.

20. Slimane B Ben, Ezzine O, Dhahri S, Ben Jamaa ML. Essential oils from two Eucalyptus from Tunisia and their insecticidal action on Orgyia trigotephras (Lepidotera, Lymantriidae). Biol Res. 2014;47(1):1–8.

21. EMA/HMPC. Assessment report on Eucalytus globulus Labill ., Eucalyptus polybractea R . T . Baker and / or Eucalyptus. Eur Med Agency. 2013;44(March):2–11.

22. Raudonis R. Skysčių chromatografijos pokolonėlinių metodų optimizavimas augalinių antioksidantų tyrimams. 2012;

23. Lattanzio V. Phenolic Compounds: Introduction. In: Natural Products [Internet]. Berlin, Heidelberg: Springer Berlin Heidelberg; 2013. p. 1543–80. Available from:

http://link.springer.com/10.1007/978-3-642-22144-6_57

24. Kurmukov AG. Phytochemistry of medicinal plants. Med Plants Cent Asia Uzb Kyrg. 2013;1(6):13–4.

25. Máthé A. Medicinal and aromatic plants. Encycl Life Support Syst. 2009;(October):11. 26. Balasundram N, Sundram K, Samman S. Phenolic compounds in plants and agri-industrial

by-products: Antioxidant activity, occurrence, and potential uses. Food Chem. 2006;99(1):191– 203.

27. Huang WY, Cai YZ, Zhang Y. Natural phenolic compounds from medicinal herbs and dietary plants: Potential use for cancer prevention. Nutr Cancer. 2010;62(1):1–20.

28. Ganesan D, Al-Sayed E, Albert A, Paul E, Singab ANB, Govindan Sadasivam S, et al. Antioxidant activity of phenolic compounds from extracts of Eucalyptus globulus and

Melaleuca styphelioides and their protective role on D-glucose-induced hyperglycemic stress and oxalate stress in NRK-49Fcells. Nat Prod Res [Internet]. 2017;(June):1–7. Available from: http://doi.org/10.1080/14786419.2017.1343324

29. Aguirre L, Arias N, Macarulla MT, Gracia A, Portillo MP. Beneficial effects of quercetin on obesity and diabetes. Open Nutraceuticals J. 2011;4(1):189–98.

30. De Siqueira Mota V, Turrini RNT, De Brito Poveda V. Antimicrobial activity of Eucalyptus globulus oil, xylitol and papain: A pilot study. Rev da Esc Enferm. 2015;49(2):216–20.

31. Martos J, Ferrer Luque CM, González-Rodríguez MP, Arias-Moliz MT, Baca P. Antimicrobial activity of essential oils and chloroform alone and combinated with cetrimide against

Enterococcus faecalis biofilm. Eur J Microbiol Immunol (Bp) [Internet]. 2013;3:44–8. Available from:

http://www.pubmedcentral.nih.gov/articlerender.fcgi?artid=3832082&tool=pmcentrez&rendert ype=abstract

32. Mekonnen A, Yitayew B, Tesema A, Taddese S. In Vitro Antimicrobial Activity of Essential Oil of Thymus schimperi, Matricaria chamomilla, Eucalyptus globulus, and Rosmarinus officinalis. Int J Microbiol. 2016;2016.

33. Chandra Shekar B, Nagarajappa R, Singh R, Thaku R. Antimicrobial efficacy of the

combinations of Acacia nilotica, Murraya koenigii L. sprengel, Eucalyptus hybrid and Psidium guajava on primary plaque colonizers. J Basic Clin Pharm [Internet]. 2014;5(4):115. Available from: http://www.jbclinpharm.org/text.asp?2014/5/4/115/141954

34. Dezsi Ş, Bədərəu AS, Bischin C, Vodnar DC, Silaghi-Dumitrescu R, Gheldiu AM, et al.

Antimicrobial and antioxidant activities and phenolic profile of Eucalyptus globulus Labill. and Corymbia ficifolia (F. Muell.) K.D. Hill & L.A.S. Johnson leaves. Molecules. 2015;20(3):4720– 34.

35. Khan N., Abbasi A. M., Dastagir G., Nazir A., Shah G. M. SM. and SMH. Ethnobotanical and antimicrobial study of some Selected medicinal plants used in Khyber Pakhtunkhwa (KPK) as apotential source to cure Infectious diseases. Complement Altern Med. 2014;2 – 10.

36. Wong JH, Lau KM, Wu YO, Cheng L, Wong CW, Yew DTW, et al. Antifungal mode of action of macrocarpal C extracted from Eucalyptus globulus Labill (Lan An) towards the dermatophyte Trichophyton mentagrophytes. Chinese Med (United Kingdom). 2015;10(1):1–7.

37. Gavanji S, Sayedipour SS, Larki B, Bakhtari A. Antiviral activity of some plant oils against herpes simplex virus type 1 in Vero cell culture. J Acute Med [Internet]. 2015;5(3):62–8. Available from: http://dx.doi.org/10.1016/j.jacme.2015.07.001

38. G. Bedi Sahouo, Z.F. Tonzibo, B. Boti, C. Chopard JPM and YTN. Anti-inflammatory and analgesic activities: chemical constituents of essential oils of. Bull Chem Soc Ethiop. 2003;17(2):191–7.

anti-inflammatory effects of essential oils of Eucalyptus. J Ethnopharmacol. 2003;89(2–3):277–83.

40. Liapi C, Anifantis G, Chinou I, Kourounakis AP, Theodosopoulos S, Galanopoulou P. Antinociceptive properties of 1,8-cineole and β- pinene, from the essential oil of Eucalyptus camaldu lensis leaves, in rodents. Planta Med. 2007;73(12):1247–54.

41. Asgharpour F, Pouramir M, Khalilpour A, Asgharpour Alamdar S, Rezaei M. Antioxidant activity and glucose diffusion relationship of traditional medicinal antihyperglycemic plant extracts. Int J Mol Cell Med [Internet]. 2013;2(4):169–76. Available from:

http://www.pubmedcentral.nih.gov/articlerender.fcgi?artid=3927381&tool=pmcentrez&rendert ype=abstract

42. Ghaffar A, Yameen M, Kiran S, Kamal S, Jalal F, Munir B, et al. Chemical composition and in-vitro evaluation of the antimicrobial and antioxidant activities of essential oils extracted from seven eucalyptus species. Molecules. 2015;20(11):20487–98.

43. Wong-Paz JE, Contreras-Esquivel JC, Rodríguez-Herrera R, Carrillo-Inungaray ML, López LI, Nevárez-Moorillón G V., et al. Total phenolic content, in vitro antioxidant activity and chemical composition of plant extracts from semiarid Mexican region. Asian Pac J Trop Med.

2015;8(2):104–11.

44. Mahmoudzadeh-Sagheb H, Heidari Z, Bokaeian M, Moudi B. Antidiabetic effects of Eucalyptus globulus on pancreatic islets: a stereological study. Folia Morphol (Warsz)

[Internet]. 2010;69(2):112–8. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20512762

45. Dey B, Mitra A, Katakam P, Singla RK. Exploration of natural enzyme inhibitors with hypoglycemic potentials amongst Eucalyptus Spp. by in vitro assays. World J Diabetes [Internet]. 2014;5(2):209–18. Available from:

http://www.pubmedcentral.nih.gov/articlerender.fcgi?artid=3990318&tool=pmcentrez&rendert ype=abstract

46. Singla N, Thind RK, Mahal AK. Potential of eucalyptus oil as repellent against house Rat, Rattus rattus. Sci World J. 2014;2014.

47. Hussin AH. Adverse Effects Of Herbs And Drug-Herbal Interactions. Malaysian J Pharm [Internet]. 2001;1(2):39–44. Available from:

http://www.mps.org.my/publications/journal_of_pharmacy2/continuing_pharmacy_education.p df

48. Natural Medicines [Internet]. trc. 2018. p. 2–5. Available from:

https://naturalmedicines.therapeuticresearch.com/tools/interaction-checker.aspx#F

49. Patel S, Wiggins J. Eucalyptus oil poisoning. Arch Dis Child. 1980;55(5):405–6.

50. Niki E. Assessment of antioxidant capacity in vitro and in vivo. Free Radic Biol Med [Internet]. 2010;49(4):503–15. Available from: http://dx.doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2010.04.016

51. Miguel MG. Antioxidant activity of medicinal and aromatic plants. A review. Vol. 25, Flavour and Fragrance Journal. 2010. p. 291–312.

52. Wootton-Beard PC, Moran A, Ryan L. Stability of the total antioxidant capacity and total polyphenol content of 23 commercially available vegetable juices before and after in vitro digestion measured by FRAP, DPPH, ABTS and Folin-Ciocalteu methods. Food Res Int

[Internet]. 2011;44(1):217–24. Available from: http://dx.doi.org/10.1016/j.foodres.2010.10.033

53. Karadag A, Ozcelik B, Saner S. Review of methods to determine antioxidant capacities. Food Anal Methods. 2009;2(1):41–60.

54. Naczk M, Shahidi F. Extraction and analysis of phenolics in food. J Chromatogr A. 2004;1054(1–2):95–111.

PRIEDAI

1 priedas

1. Kotryna Kolpakova, Kristina Zymonė, Mindaugas Liaudanskas, Valdimaras Janulis. Composition analysis of Eucalyptus L'Hér. leaves phenolic compounds. The 8th International Conference on Pharmaceutical Sciences and Pharmacy Practice. December 15, 2017, Kaunas.

2. Kotryna Kolpakova, dr. Kristina Zymonė, dr. Mindaugas Liaudanskas, prof. habil. dr. Valdimaras Janulis (LSMU). Eukaliptų lapų fenolinių junginių sudėties tyrimas. Dvidešimt ketvirtoji tarptautinė mokslinė-praktinė konferencija „Žmogaus ir gamtos sauga 2018“, 2018 m. gegužės 9-11 d., Kaunas.

3. Kotryna Kolpakova, Kristina Zymonė, Mindaugas Marksa, Liudas Ivanauskas, Mindaugas Liaudanskas, Valdimaras Janulis. Qualitative and Quantitative Analysis of Eucalyptus (Eucalyptus Globulus L., Eucalyptus Viminalis L.) Leaf Essential Oil. 12th International Scientific Conference "The Vital Nature Sign" May 17-18th, 2018, Kaunas, Lithuania.