PARTE SPERIMENTALE
TRATTAMENTI MEDIA D.S Steli Recisi 13,00 2,
Steli su Pianta 12,64 2,74
3.2 - Dimensioni dei bocci fiorali
- Azienda Campetti
Analizzando i risultati ottenuti (fig.23), si può notare come si sia verificato un aumento della lunghezza dei primi tre bocci fiorali degli steli trattati in tutte e 4 le cultivar rispetto ai testimoni non trattati. Questo aumento è evidente nel 1º, nel 2º e nel 3º boccio fiorale, anche se nella media di tutte le cultivar questo effetto non è risultato sempre statisticamente significativo.
Analizzando l’effetto dei trattamenti sulle singole cultivar, nella cv L1 sul 1º boccio fiorale la tesi A e il Mix hanno determinato un incremento significativo della lunghezza (fig.24)
In L2 la tesi A ha determinato un aumento significativo della lunghezza in tutti e 3 bocci fiorali, il Mix sul 1º e sul 3º, mentre tutti i trattamenti hanno determinato un aumento significativo della lunghezza del 3º boccio fiorale (fig.25).
In L3 la tesi A ha incrementato significativamente le dimensioni del 1º e 2º boccio fiorale, la tesi B soltanto del 1º , il Mix del 3º, mentre la tesi E di tutti e tre bocci fiorali.(fig.26)
In L4 le tesi A e B hanno incrementato significativamente le dimensioni del 1º boccio fiorale, mentre le tesi B, E e Mix del 3º boccio fiorale (fig.27).
Fig.23. Lunghezza dei primi 3 bocci fiorali nella media delle 4 cultivar
Fig.25. Lunghezza dei bocci fiorali in L2 (Tresor)
Fig.26. Lunghezza dei bocci fiorali in L3 (Menorca)
3.3 - Miglioramento del colore dei tepali con somministrazione di prodotti
Al fine di migliorare la colorazione dei tepali in periodo di coltivazione piuttosto sfavorevole sono stati effettuati diversi trattamenti nelle due aziende. Sulla base dei dati noti in letterature sono stati impiegate dieverse sostanze, che su diverse piante hanno portato ad un miglioramento della colorazione.una utilizzando dei prodotti che sono noti influenzare la colorazione (mettere bibliografia).
I trattamenti sono stati diversi per le due aziende e vengono quindi separati i risultati ottenuti.
- Azienda Campetti
I trattamenti effettuati (A-B-E-ABE) hanno permesso di evidenziare un miglioramento del colore dei tepali, visibile già ad occhio nudo, principalmente nelle cultivars L1 (fucsia) e L4 (bianco/rosa). Nella cultivar L2 (arancio) invece non c’e’ stato un miglioramento del colore visivamente apprezzabile, mentre nella varietà L3 (crema) l’unico trattamento che ha evidenziato dei miglioramenti percepibili, per quanto riguarda l’accentuazione della colorazione dei tepali, è stato quello fatto con la kinetina.
Cultivar Fangio (L1):
Fig. 28. cultivar Fangio (tesi A vs test) Fig. 29. cultivar Fangio (tesi B vs test)
Fig. 32 particolare petali cultivar Fangio Fig 33 particolare petali cultivar Fangio (tesi B vs test) (tesi E vs test)
Fig 34. particolare petali cultivar Fangio (tesi ABE vs test)
Cultivar Cavalese (L4):
Fig 37. cultivar Cavalese (tesi E vs test) Fig 38 cultivar Cavalese (tesi ABE vs test)
Fig 39. panoramica di tutti i trattamenti messi a confronto con il testimone
Fig 40. particolare petali cultivar Cavalese Fig 41. particolare petali cultivar Cavalese (tesi A vs test) (tesi E vs test)
Cultivar Menarca (L4):
Fig.42 cultivar Menorca (tesi B vs test)
- CRA-ISF
Anche i risultati ottenuti al CRA-ISF hanno confermato che ad occhio nudo si possono apprezzare delle variazioni di colore. In particolare, una evidente accentuazione del colore si è avuta nelle cultivars L4 (Cavalese) e L3 (Menorca) con i trattamenti a base di kinetina o ed anche con il Bion (non utilizzato dal Campetti).
Cultivar Cavalese (L4):
Fig 43. cultivar Cavalese (tesi D vs test) Fig 44 cultivar Cavalese (tesi B vs test)
Cultivar Menorca:
3.4 - Analisi dei dati ottenuti dallo spettrocolorimetro
- Azienda Campetti
Lo spettrocolorimetro rappresenta una nuova metodologia per la valutazione del colore in floricoltura, ed è stata messa a punto con questa tesi Infatti mediante questo strumento è stato possibile verificare quale parametro di colore fosse influenzato da trattamenti specifici, cioè L*,a* e b* e l’indice ∆E , questi parametri esprimono rispettivamente: la luminosità, l’andamento dal verde al rosso, l’andamento dal giallo al blu e infine ∆E* = (radq(∆L*2 + ∆a*2 + ∆b*2
)).
L’utilizzo dello spettrocolorimetro ha permesso di evidenziare anche differenze di colore minime, non percepibili ad occhio nudo, e di confermare i risultati già visibili nelle foto precedenti.
Tendenzialmente, tutti i trattamenti hanno determinato un aumento dell’intensità del colore dei tepali nelle cv L1 (tab.7) ed L4 (tab.8), come era stato percepito anche ad occhio nudo, in seguito a variazioni dei valori di L*, a* e b*.
Nella cv L1 (tab.7), in particolare, L* tende a diminuire in seguito ai trattamenti, con una percezione più scura dell’immagine, a* rimane uguale, mentre b* tende ad aumentare in seguito ai trattamenti, andando dalle tonalità blu verso il giallo. Considerando l’indice ∆E del 1° fiore, del 2° fiore, del 3° fiore e della media dei primi tre fiori, si vede che nel 1º fiore ∆E varia da 3,10 (tratt.E) a 5,01 (tratt.A), nel 2º fiore varia da 2,48 (tratt.E) a 4,25 (tratt.B), nel 3º fiore varia da 3,51 (tratt.A) a 4,25 (tratt.B) mentre nella media dei primi 3 fiori il ∆E varia da 2,81(tratt.E) a 3,92 (tratt.B). Nella cv L4 (tab.8), il ∆E medio dei tre fiori è risultato compreso tra 2,64 (tratt.E) e 3,12 (tratt.B). Tuttavia queste variazioni di colore sono risultate dovute a diverse variazioni dei tre parametri a seconda del trattamento effettuato. Infatti, nel trattamento B il valore di L* è risultato più elevato, avvicinandosi al valore del testimone (55,79 contro 55,97), mentre il valore di b* è risultato di gran lunga il più basso in assoluto (3,21) rispetto sia al testimone (5,70) che agli altri trattamenti (6,00 e 5,46). Gli altri due trattamenti (A ed E), invece, si diversificano dal testimone solo per un aumento del valore di A (rispettivamente 30,19 e 30,04 rispetto a 28,08 del controllo).
Relativamente alle altre due cultivars, L2 (tab.9) e L3 (tab.10), Lo strumento ha permesso di confermare, come si era già visto ad occhio nudo, che i trattamenti hanno determinato variazioni di colore molto lievi e non percepibili ad occhio nudo.
Tab 7. Valori medi di L*, a*, b* e di ∆E* (Trattamento vs Testimone) per differenti trattamenti sulla cv Fangio relativamente ai primi tre fiori per stelo (i valori che non presentano lettere uguali sono significativamente diversi per P≤0,05 – Test SNK)
TRATTAMENTO L* a* b* ∆ E* (1° fiore) ∆ E* (2° fiore) ∆ E* (3° fiore) ∆ E* (media) A 39,06 bc 31,98 a 6,55 a 5,01 3,24 3,51 3,54 B 38,76 c 32,01 a 6,85 a 3,51 4,26 4,25 3,92 E 39,85 b 32,37 a 6,58 a 3,10 2,48 3,71 2,81 ABE 39,18 bc 32,05 a 6,44 a 3,33 3,45 3,87 3,38 TEST 42,39 a 32,26 a 5,40 b - - - -
Tab 8. Valori medi di L*, a*, b* e di ∆E* (Trattamento vs Testimone) per differenti trattamenti sulla cv Cavalese relativamente ai primi tre fiori per stelo (i valori che non presentano lettere uguali sono significativamente diversi per P≤0,05 – Test SNK)
TRATTAMENTO L* a* b* ∆E* (media) A 53,81 b 30,19 a 6,00 a 3,04 B 55,79 a 29,96 a 3,21 b 3,12 E 54,22 b 30,04 a 5,46 a 2,64 TEST 55,97 a 28,08 b 5,70 a -
Tab 9. Valori medi di L*, a*, b* e di ∆E* (Trattamento vs Testimone) per differenti trattamenti sulla cv Tresor relativamente ai primi tre fiori per stelo (i valori che non presentano lettere uguali sono significativamente diversi per P≤0,05 – Test SNK)
TRATTAMENTO L* a* b* ∆ E* (media) A 55,87 a 42,35 a 48,68 a 1,99 B 56,01 a 43,26 a 49,86 a 0,94 ABE 55,86 a 42,87 a 49,10 a 1,54 TEST 56,71 a 42,93 a 50,39 a -
Tab. 10. Valori medi di L*, a*, b* e di ∆E* (Trattamento vs Testimone) per differenti trattamenti sulla cv Menorca relativamente ai primi tre fiori per stelo (i valori che non presentano lettere uguali sono significativamente diversi per P≤0,05 – Test SNK)
TRATTAMENTO L* a* b* ∆ E* (media) A 68,64 a 18,25 a 36,92 a 1,02 B 69,25 a 19,16 a 38,18 a 1,08 E 68,42 a 19,66 a 38,61 a 1,22 TEST 68,34 a 18,91 a 37,65 a - 4
–
DISCUSSIONE E CONCLUSIONILa qualità della pianta di Lilium è spesso influenzata dalla stagione di coltivazione. E’ risaputo che durante la stagione autunno-invernale, quando fattori come la radiazione solare e la temperatura sono sfavorevoli, le caratteristiche morfologiche del Lilium siano peggiori rispetto alle coltivazioni primaverili ed estive. La pianta spesso presenta una maggiore percentuale di aborti fiorali, un precoce appassimento e un’attenuazione dell’intensità del colore dei fiori, fattori imputabili ad una ridotta fotosintesi e ad una conseguente minor disponibilità di zuccheri.
Nelle prove effettuate presso l’azienda Campetti e presso il CRA-ISF di Pescia (PT), si è cercato di trovare le condizioni per ottenere fiori con colori brillanti e steli fiorali di buona qualità anche in epoca sfavorevole, mediante l’utilizzo di sostanze semplici e di facile reperimento da parte del floricoltore.
Per la misurazione dell’intensità del colore è stata adottata una tecnica nuova, cioè è stato impiegato uno spettrocolorimetro che ha garantito semplici ed immediate misure dei vari parametri del colore. Lo spettrocolorimetro trova impiego in altri settori industriali, dal settore alimentare a quello automobilistico (verniciature), ed è stato messo a punto in questa tesi per un nuovo utilizzo.
La sensibilità dell’apparecchio e la facilità di impiego hanno permesso di ottenere centinaia di dati in pochi minuti, permettendo di rilevare anche minime differenze di colore fra i controlli ed i trattati in quelle cultivars in cui questa differenza non era cosi’ evidente ad occhio nudo. Il suo facile trasporto, mediante una valigetta, può permettere le misure direttamente in campo senza distruzione di materiale vegetale. La tecnologia utilizzata, inoltre, grazie al fatto che il software dello strumento emette dati numerici, permette un confronto tra prove effettuate a distanza nel tempo e nello spazio,
cosa che invece non sarebbe possibile con altre tecniche (ad es. carte colorimetriche) o mediante il confronto di immagini fotografiche.
L’utilizzo di zuccheri (saccarosio o fruttosio + glucosio), di solfato potassico e di stimolatori di antociani (Bion e kinetina), generalmente applicati su prodotti orto-frutticoli, hanno garantito un miglioramento significativo della colorazioni dei fiori, soprattutto in quelli dalle tonalità fucsia (cv Fangio) e rosa (cv Cavalese).
Questi dati trovano conferma in prove effettuate da altri autori. Solfanelli et al. (2006) hanno infatti dimostrato che la somministrazione di zuccheri a piantine di Arabidopsis provoca un aumento della biosintesi di antociani, facendo diventare le foglioline rosse. In altre prove, invece, è stato dimostrato che la somministrazione per via fogliare di solfato potassico su prodotti ortofrutticoli migliora sensibilmente il colore della buccia in situazioni particolari in cui la radiazione solare risulta insufficiente (ad es. pomodoro o melanzana coltivati nel Nord-Italia) o in cui l’escursione termica giornaliera in estate non risulta elevata (ad es. mele a buccia rosa, tipo Pink Lady, coltivate nel Centro-Italia) (Pierandrei, comunicazione personale). Infine, prodotti come il Bion o la kinetina sono stati impiegati da altri autori al fine di migliorare alcune caratteristiche come, rispettivamente, la resistenza alle infezioni parassitarie (Muccinelli, 2004) e la longevità delle piante (Pinelli e Veraldi, 2004); questi prodotti, tuttavia, si sono rivelati in grado anche di incrementare la biosintesi di antocianine, come il Bion sull’uva (Iriti et al., 2004) o la kinetina su colture cellulari di
Campthoteca (Pasqua et al., 2005).
Queste sostanze, inoltre, nelle nostre prove, hanno determinato un miglioramento di altri importanti aspetti qualitativi dello stelo fiorale. Infatti, il rifornimento di sostanze energetiche mediante spruzzatura fogliare ha permesso una totale riduzione degli aborti fiorali nelle piante trattate, mentre i controlli hanno presentato una percentuale di aborti rilevante (tra il 5 ed il 12%). Un ulteriore aspetto migliorato dai trattamenti è stata la longevità degli steli, risultata tendenzialmente più alta nelle piante trattate rispetto ai testimoni non trattati. Infine, i trattamenti hanno anche determinato un aumento delle dimensioni dei bocci fiorali in tutte le cultivars testate.
In conclusione, la prova ha dimostrato che l’apporto di sostanze energetiche, di facile reperimento da parte del vivaista, alle piante di Lilium, in periodi in cui le condizioni climatiche sono sfavorevoli, consente di ovviare a diversi problemi che in inverno affliggono i coltivatori. Tutto ciò può consentire la produzione di fiori di ottima qualità per tutto l’arco dell’anno e un conseguente soddisfacimento del consumatore finale che può trovare in ogni stagione un buon prodotto.
Bibliografia
ACCATI E., BARNI E.,DEVECCHI M., GIORZA G., 1994. Influenza delle concimazioni sul colore di
spighe fiorali di gladiolo. Italus Hortus 1: 16-22
ACCATI, E., 1986. I fitoregolatori nel metabolismo stagionale delle piante: riflessi eventuali sui
bonsai.
ASEN S., 1976. Known Factors Responsible For Infinite Flower Color Variations. Acta Hort. 63:
217-223.
ASEN S., STEWART R.N., NORRIS K.H., 1977. Anthocyanin and pH involved in the color of
‘Heavenly Blue’ morning glory. Phytochemistry 16, 1118-1119.
BASS R.,BRANDS A.,STRAVER N., 1995. Growth regulation of bedding plants and poinsettia using
low phosphorus fertilization and ebb-and-flow irrigation. Acta Hort. 378: 129-137.
BEEL E.,PIENS G., 1990. Uptake and leaching aspects with different methods of fertilization for the
culture of Azalea indica in the open. Verbondsnieuws voor de Belgische Sierteelt. 34: 15, 781-
785.
BIRAN I., HALEVY A.H., 1974. Effects of varying light intensities and temperature treatments
applied to whole plants, or locally to leaves or flower buds, on growth and pigmentation of 'baccara' rose flowers. Physiol. Plant 31: 175- 179
BOO H., TOMITAKA Y., ICHIMURA M., KIMURA M., 1997. Effect of environmental factors on
anthocyanin synthesis and sugar content in Cichorim intybus L. var. foliosum. Environ. Control
Biol. 35: 91-98.
BORKOWSKI J., SZWONEK E., 1986. Effect of potassium and magnesium on the quality of tomato
fruits. Acta Hort.. 191: 133-139.
BROUILLARD R., DANGLES O., 1993. Flavonoids and flower colour. Harborne, J.B. (ed), The
Flavonoids: Advances in Research Since 1986. Chapman & Hall, London, pp. 565-587.
BURCHI G.,BALLARIN A.,PRISA D.,NESI B.,PIERANDREI F.,GRASSOTTI A., 2006. Miglioramento e
conservazione della qualità postraccolta in Lilium. Italus Hortus 6 (in corso di stampa).
BURCHI G.,PIERANDREI F.,D’ANDREA S.,PINCU M.,MENESATTI P.,GRASSOTTI A., 2005. Risposta
di due cultivar di Lilium asiatico a trattamenti fogliari per il miglioramento della colorazione dei fiori. Flortecnica 1/2, 87-92.
Celikel F.G., Dodge L.L., Reid M.S. 2002. Efficacy of 1- MCP and Promalin for extending the postharvest life of Oriental lilies . Scientia Hortic: 93 : 149-155
Davies K.M.,Schwinn K.E.,1997, Flower color. In: Biotecnology of Ornamental Plants, eds. R.L. Geneve, J.E. Preece and S.A. Merkle, CAB International: 259-294.
DEROLES S.C.,BRADLEY J.M.,SCWHINN K.E.,MARKMANN K.R.,BLOOR S.,MANSON D.G.,DAVIES
K.M., 1998. An antisense chalcone synthase cDNA leads to novel color patterns in lisianthus
(Eustoma grandiflorum) flowers. Molecular Breeding 4:59-66
DEVECCHI M., BARNI E., 1997. Effect of fertilizers on the colour of gladiolus spikes. Colture
Protette 26: 2, 79-82.
Di Genova G., 2000. Lilium: elementi di tecnica vivaistica. 40-43
E. Calderoni, N. Parrilli, 1985,La coltivazione del gladiolo in pien’aria in Emilia-Romagna
Elgar, H.J., Woolf, A.B. and Bieleski, R.L. 1999. Ethylene production by 3 lily species and their response to ethylene exposure. Postharvest Biol. Technol. 16:257-267.
ELOMAA P.,HONKANEN J.,PUSKA R., SEPPANEN P.,HELARIUTTA Y.,MEHTO M., KOTILAINEN M.,
NEVALAINEN L., TEERI T.H., 1993. Agrobacterium-mediated transfer of antisense chalcone
synthase cDNA to gerbera inhibits flower pigmentation. Bio/technology 11(4): 508-511.
Filip Rolland, Elena Baena-Gonzalez, and Jen Sheen, 2006. Sugar sensing and : Conserved and Novel Mechanisms, Vol. 57: 675-709
FUKUI Y.,TANAKA N.,KUSUMI T.,IWASHITA T.,NOMOTO K., 2003. A rationale for the shift in color
towards blue in transgenic carnation flowers expressing the flavonoid 3’,5’-hydroxylase gene.
Phytochemistry 63: 15-23.
Giorgio Rampinini,Gladiolus,Clamer Informa, Novembre 2005, 29-52 Grassotti A. e Nesi B.,2002. Florovivaismo tra innovazione e novità
GRIESBACH R.J., 1995. Transgene inactivation in Petunia hybrida is influenced by the properties of
the foreign gene. Mol Gen Genet 248: 649-656.
Griesbach R.J.,(1994). An improved method for transforming plats trough electrophoresis. Plant Science 102,81-89.
Griesbach R.J.,2005 Biochemestry and Genetics of Flower Color. Plant Breeding Reviews,25:89- 114
Grotewold E., The Genetics and Biochemistry of Floral Pigments, Annu. Rev. Plant.Biol.,2006, 761-780
HALEVY A.H.,KOFRANEK A.M., 1984. Evaluation of lisianthus as a new flower crop. HortScience
19: 845-847.
HALEVY A.H.,MAYAK S., 1979. Senescence and postharvest physiology of cut flowers. I. Hort. Rev.
1: 204-236.
HAN S.S., 2003. Role of sugar in the vase solution on postharvest flower and leaf quality of
Han S.S., Miller J.A. 2003. Role of ethylene in postharvest quality of cut oriental lily ‘ Stargazer’. Plant Growth Regul. 40: 213-222
HELLER W., FORKMANN G., 1993. Biosynthesis of flavonoids. In: Harborne, J.B. (ed.), The
Flavonoids: Advances in Research Since 1986. Chapman & Hall, London, pp. 499-536.
ICHIMURA K., HIRAYA T., 1998. Effect of silver thiosulfate complex (STS) in combination with
sucrose on the vase life of cut sweet pea flowers. J. Jpn. Soc. Hort. Sci. 68 [In press].
ICHIMURA K., HIRAYA T., 1998. Effect of silver thiosulfate complex (STS) in combination with
sucrose on the vase life of cut sweet pea flowers. J. Jpn. Soc. Hort. Sci. 68 [In press].
ICHIMURA K.,KORENAGA M., 1998. Improvement of vase life and petal color expression in several
cultivars of cut Eustoma flowers y sucrose with 8-hydroxyquinoline sulphate. Bull. Natl Res.
Inst. Veg. , Ornam. Plant & Tea 13: 31-39.
Iriti M., Rossoni M., Borgo M., Faoro F.,2004. Benzothiadiazole enhances resveratrol and anthocyanin biosyntesis in grapevine, meanwhile improving resistance to botrytis cinerea.
ISMEA, Filiera Fiori e Piante, Luglio 2004
ISTAT.1994-Statistiche dell’agricoltura,della zootecnia e dei mezzi di produzione
Jong Suk Lee, Mark S.Roh, Procedings of the international symposium on the genus Lilium, Taejon, Korea, 28 Agosto-1 Settembre,1994.
KAWABATA S., LI Y.H., ADACHI M., MARUYAMA H., OZAWA E., SAKIYAMA R., 2002. Role of
photoreceptor and sugar-mediated reactions in light dependent anthocyanin production in lily and stock flowers. Journal of the Japanese Society for Horticultural Science 71: 2, 220-225.
KOFRANEK A.M., 1985. Postharvest physiology of cut flowers. In: S.P. Singh (ed.). Short season
flowering plants. B.R. Publishing, Dehli, India. P. 239-252
KONDO T.,YOSHIDA K.,NAKAGAWA A.,KAWAI T.,TAMURA H.,GOTO T.,1992. Structural basis of
blue-colour development in flower petals from Commelina communis. Nature 358: 515-518.
KOYAMA Y.,UDA A., 1994. Effect of temperature, light intensity and sucrose concentration on bud
forcing and carnation flower quality. J. Japan. Soc. Hort. Sci. 63: 203-209.
KOYAMA Y.,UDA A., 1994. Effect of temperature, light intensity and sucrose concentration on bud
forcing and carnation flower quality. J. Japan. Soc. Hort. Sci. 63: 203-209.
KUSUHARA Y., KAWABATA S., SAKIYAMA R., 1996. Effects of light intensity and sucrose
concentration on the petal color and the expression of anthocyanin biosynthetic genes in detached flowers of Eustoma grandiflorum. J. Jpn. Soc. Hort. Sci., 65 (suppl.2), 550-551.
LEE A.K., SUH J.K., 1996. Effect of harvest stage, pre- and post-harvest treatment on longevity of
De Ranieri M., G.C. Fanizza, A. Callegari, Lilium-Aspetti botanici e varietali,Giornate di floricoltura,Viareggio 13-14 Giugno 1984. 5-21
Maffei M.,1999. Metabolismo e prodotti secondari delle piante, Utet.
MARTENS S., KNOTT J., SEITZ C.A., JANVARI L., YU S.N., FORKMANN G., 2003. Impact of
biochemical pre-studies on specific metabolic engineering strategies of flavonoid biosynthesis in plant tissues. Biochemical Engineering Journal 14: 227-235
MAZZA G.,MINIATI E., 1993. Color stabilization and intensification. In: Mazza G and Miniati E
(ed) Anthocyanins in Fruits, Vegetables, and Grains. CRC Press, Boca Raton, FL, pp. 1-10. Mercuri A., De Benedetti L., Bruna S., Bregliano R., Bianchini C., Foglia G., Schiva T., 2003.
Agrobacterium-mediated transformation with Rol genes of Lilium longiflorum Thunb. Acta
Horticulturae 129-136.
MEYER P.,HEIDMANN I.,FORKMANN G.,SAEDLER H.,1987. A new petunia flower colour generated
by trasformation of a mutant with a maize gene. Nature 330: 677-678
Muccinelli, pronuario fitofarmaci, decima edizione, Edagricole, 2004, pag 120-121
NETA S.I.,SHOSEYOV O., WEISS D., 2000. Sugars enhance the expression of gibberellin-induced
genes in developing petunia flowers. Physiol Plant. 109: 196-202.
NIELSEN K., DEROLES S., MARKMANN K.R., BRADLEY M.J., PODIVINSKY E., MANSON D., 2002.
Antisense flavanol synthase alters copigmentation and flower color in lisianthus. Mol Breed 9: 217-229.
NOWAK J.,STROKA S.,MALOUPA E.,GERASOPOULOS D., 2001. The effect of phosphourus nutrition
on growth, flowering and chlorophyll fluorescence of New Guinea impatiens ‘Pago Pago’. Acta
Hort. 548: 561-565.
Nowak, J. e Mynett, K. 1985. The effect of sucrose, STS and 8-HQC on the quality of Lilium inflorescences cut at the bud stage and stored at low temperature. Scientia Hort. 25:299-302
OREN-SHAMIR M.,NISSIM-LEVI A.,OVADIA R.,KAGAN S.,SHAKED-SACHRAY L., 2003. Increased
Anthocyanin Accumulation in Flowers and Foliage at Elevated Temperatures is Affected by Magnesium Treatment. Acta Hort. 624: 171-176
PARUPS E.V.,MOLNAR J.M., 1972. Histochemical study of xylem blockage in cut roses. J. Am. Soc.
Hort. Sci. 97: 532-534.
PARUPS E.V.,MOLNAR J.M., 1972. Histochemical study of xylem blockage in cut roses. J. Am. Soc.
Hort. Sci. 97: 532-534.
Gabriella P., Barbara Monacelli, Nadia Mulinacci, Simona Rinaldi, Catia Giaccherini, Marzia Innocenti, Franco Francesco Vinceri The effect of growth regulators and sucrose on anthocyanin production in Camptotheca acuminata
cell cultures Plant Physiology and Biochemistry 43 (2005) 293-298
Pinelli S., Veraldi S., Maggio-Giugno 2004, Dermo Cosmo, vol. 2 num. 3.
RAK J., NOWAK J., 1989. The effect of gibberellic acid on growth and flowering of snapdragon
cutting. Acta Hort. 251: 67-69.
Rumine P,1984.I principali nemici animali del genere Lilium
SAKS Y., SONEGO L., BEN-ARIE R., 1990. Artificial light enhances red pigmentation, but not
ripening, of harvested ‘Anna’ apples. Hort. Sci., 25: 547-549
SALISBURY F.B., ROSS C.W., 1992. Flavonoids. In: Plant Physiology, Wadsworth Publishing Co.
(U.S.A.), 359-362
SANG C.K., YUN H.S., KIM H.Y., 1992. Effects of light, sucrose and growth regulators on the
colouration of cut snapdragon flower. Journal of the Korean Society for Horticultural Science
33: 1, 79-86.
SEITZ C.,OSWALD N.,BORSTLING D.,FORKMANN G., 2003. Being acyanic: an unavoidable fate for
many white flowers? Acta Hort 612: 83-88
SHAKED-SACHRAY L.,WEISS D.,REUVENI M.,NISSIM-LEVI A.,OREN-SHAMIR M.,2002. Increased
anthocyanin accumulation in aster flowers at elevated temperatures due to magnesium treatment. Physiologia Plantarum 114: 559-565
SHUMAN L.M.,1992. Mineral nutrition. In: Plant-environment interactions. (Ed. R.E. Wilkinson),
Marcel Dekker, Inc., New York, Basel, Hong Kong, pp. 149-182.
SHVARTZ M., BOROCHOV A., WEISS D., 1997. Low temperature enhances petunia flower
pigmentation and induces chalcone synthase gene expression. Physiol Plant 99: 67-72.
SINDHU S.S.,PATHANIA N.S., 2003. Effect of Pulsing, Holding and Low Temperature Storage on
Keeping Quality of Asiatic Lily Hybrids. Acta Hort. 624: 389-394.
SOLFANELLI C., POGGI A., LORETI E., ALPI A., PERATA P., 2006. Sucrose-Specific induction of the anthocyanin biosynthetic pathway in Arabidopsis.
STEWART R.N.,NORRIS K.H.,ASEN S.,1975. Microspectrophotometric measurement of pH and pH
effects on the color of petal epidermal cells. Phytochemistry 14: 937-942
SWARTH, A. 1980. Quality of Lilium ’Enchantment’ flowers as influenced by season and STS. Acta Hort. 113:45-49.
TSUKAYA H., 1991. Sugar-dependent expression of the CHS-A gene for chalcone synthase from
UDDIN, A. F. M. J., HASHIMOTO, F., SHIMIZU, K., SAKATA, 2004. Monosaccharides and chitosan sensing in bud growth and petal pigmentation in Eustoma grandiflorum .Scientia Horticulturae, (Vol. 100) (No. 1/4) 127-138
VAN DOORN W.G., WOLTERING E.J. 1991. Developments in the use of growth regulators for the mantainance of postharvest quality in cut flowers and potted plants. Acta Hort. 298: 195- 209.
VAN TUNEN A.J., MOL J.N.M., 1991. Control of flavonoid synthesis and manipulation of flower
colour. In: Grierson, D. (ed), Developmental Regulation of Plant Gene Expression pp. 94-130.
VITRAC X., LARRONDE F., KRISA S., DECENDIT A., DEFFIEUX G., MERILLON J.M., 2000. Sugar
sensing and Ca –calmodulin requirement in Vitis vinifera cells producing anthocyanins.
Phytochemistry 53: 659-665.
WATAD A.A., D.J. Yun, T. Matsumoto, X. Niu, Y. Wu, A.K. Kononowicz, R.A. Bressan, P.M. Hasegawa, 1998, Microprojectile bombardment-mediated transformation of Lilium.
WEISS D.,HALEY A.H., 1991. The role of light reactions in the regulation of anthocyanin synthesis
in Petunia corollas. Physiol. Plant. 81: 127-133
WOODSON W.R., WANG H., 1987. Invertases of carnation petals: Partial purification,
characterization and changes in activity during petal growth. Physiol. Plant. 71: 224-228.
WOODSON W.R., WANG H., 1987. Invertases of carnation petals: Partial purification,
characterization and changes in activity during petal growth. Physiol. Plant. 71: 224-228.
YOSHIDA K., 1995. Cause of blue petal colour. Nature 373: 291.
Zaiton A., Affrida A.H., Mohd Nazir B.,2003. Changing Flower Colours in Orchids. Malaysian Institute for Nuclear technology and Research, Ornamental Group, Agrotechnology e Biosciences Division. http//www.mint.gov.my/Rnotespdf/Research%20Note%2003.pdf
ZUKER A.,TZIFIRA T.,BEN-MEIR H.,OVADIS M.,SHKLARMAN E.,ITZHAKI H.,2002. Modification of
flower color and fragrance by antisense suppression of the flavanone 3-hydroxylase gene. Mol