cittadino di Stato non appartenente all Unione Europea regolarmente soggiornante in Italia

Il/la sottoscritto/a MICHELA BULFONI

nato/a SAN VITO AL TAGLIAMENTO (PN) il 15/06/1988 residente in CODROIPO via PEVARIS n. 31

c.a.p. 33033

 cittadino dell’Unione Europea

 cittadino di Stato non appartenente all’Unione Europea regolarmente soggiornante in Italia

 cittadino di Stato non appartenente all’Unione Europea autorizzato a soggiornare nel territorio dello Stato italiano

 cittadino di Stato non appartenente all’Unione Europea

consapevole, ai sensi dell’articolo 76 del D.P.R. 445/00, che chiunque rilascia dichiarazioni mendaci, forma atti falsi o ne fa uso è punito ai sensi del codice penale e delle leggi speciali in materia,

DICHIARA

che il proprio curriculum è il seguente:

F

I

Nome

MICHELA BULFONI

Indirizzo

V

PEVARIS

°31, 33033 CODROIPO (UDINE)

Telefono

+39 3402445356

Fax

Codice Fiscale

BLFMHL88H55I403U

E-mail

michela.bulfoni@alice.it michela.bulfoni@uniud.it

Nazionalità

Italiana

15.06.1988

E

• Date (da – a) Da Settembre 2014 - attualmente

• Nome e indirizzo del datore di lavoro

SOC Istituto di Anatomia Patologica, Azienda Sanitaria Universitaria Integrata di Udine ASUIUD Centro Servizi e Laboratori (CSL), diretto dalla Prof. C. Di Loreto

• Tipo di azienda o settore Medicina di Laboratorio- Anatomia patologica

• Tipo di impiego Biologo assegnista di ricerca

• Principali mansioni e responsabilità Collaborazione per progetti di ricerca e diagnostica di routine.

• Date (da – a) Novembre 2013- Settembre 2014

• Nome e indirizzo del datore di

lavoro SOC Istituto di Anatomia Patologica, Azienda Sanitaria Universitaria Integrata di Udine ASUIUD Centro Servizi e Laboratori (CSL), diretto dalla Prof. C. Di Loreto

• Tipo di azienda o settore Medicina di Laboratorio - Anatomia Patologica

• Tipo di impiego Biologo borsista

• Principali mansioni e responsabilità Collaborazione per progetti di ricerca e diagnostica di routine.

• Date (da – a) Agosto 2007-Novembre 2013

• Nome e indirizzo del datore di lavoro

BAR-Pizzeria “Colomba” di Colomba Ornella, Piazza Scuole 6, Codroipo (Udine)

• Date (da – a) Novembre 2009-Gennaio 2010

• Nome e indirizzo del datore di lavoro

Dipartimento di Scienze Mediche e Biologiche DSMB, Università degli studi di Udine, Piazzale Kolbe 4, Udine, diretto dalla Prof. I. Mavelli

• Tipo di azienda o settore Ricerca biomedica

• Tipo di impiego Tirocinio

• Principali mansioni e responsabilità Allestimento e coltura di linee cellulari umane e murine, isolamento di mitocondri mediante centrifugazione differenziale; analisi proteomica del complesso ATPsintasi e delle sue forme oligomeriche, studi polarografici del consumo di ossigeno dei membri della fosforilazione ossidativa. Standardizzazione interna dei risultati.

I

• Date (da – a) Da Ottobre 2019- attualmente

• Nome e tipo di istituto di istruzione

o formazione Università degli Studi di Pavia- Scuola di Specializzazione in Patologia clinica e Biochimica Clinica

• Principali materie / abilità

professionali oggetto dello studio Acquisizione di competenze nello studio della patologia cellulare nello studio della patologia cellulare nell’ambito dell’oncologia, immunologia e immunopatologia, della patologia genetica, citopatologica, ultrastrutturale e molecolare.

• Date (da – a) Da Settembre 2017- Aprile 2019

• Nome e tipo di istituto di istruzione

o formazione Università degli Studi di Udine- Corso di laurea in Tecniche di Laboratorio Biomedico

• Principali materie / abilità

professionali oggetto dello studio Apprendimento delle conoscenze teorico-pratiche per svolgere autonomamente le procedure tecniche necessarie all'esecuzione di metodiche diagnostiche su materiali biologici o sulla persona. L’ attività di laboratorio acquisita è focalizzata ad analisi biomediche e biotecnologiche, in particolare di biochimica, microbiologia e virologia, farmacotossicologia e farmacologia galenica, immunologia e immunometria.

• Qualifica conseguita Tecnico sanitario di Laboratorio Biomedico (L/snt3)

• Date (da – a) Giugno 2014

• Nome e tipo di istituto di istruzione

o formazione Università degli Studi di Trieste

• Date (da – a) Gennaio 2013-Ottobre 2013

• Nome e indirizzo del datore di

lavoro Istituto di Anatomia Patologica Azienda Universitaria Ospedaliero S. Maria della Misericordia – Udine, diretta dal Prof. C.A. Beltrami

• Tipo di azienda o settore Medicina di laboratorio- Anatomia Patologica

• Tipo di impiego Tirocinio

• Principali mansioni e responsabilità Biopsia Liquida: isolamento e caratterizzazione di cellule tumorali circolanti e DNA circolante da pazienti con tumore metastatico della mammella per le terapie oncologiche personalizzate, tipizzazione linfocitaria e caratterizzazione immunofenotipica di popolazioni cellulari mediante citofluorimetria (FACS), estrazione di DNA/RNA da cellule e tessuti sani e patologici, isolamento e coltura di linee cellulari primarie e/o immortalizzate.

• Date (da – a) Gennaio 2010-Settembre 2010

• Nome e indirizzo del datore di

lavoro CRO- Centro di Riferimento Oncologico- SOC Farmacologia Sperimentale e Clinica, Aviano (Pordenone), diretta dal Dr. G. Toffoli

• Tipo di azienda o settore Centro di riferimento Oncologico sperimentale e clinico

• Tipo di impiego Tirocinio

• Principali mansioni e responsabilità Analisi genetica di polimorfismi su una casistica di pazienti affette da carcinoma della mammella.

Estrazione di DNA da sangue intero, amplificazione dello stesso mediante PCR o Real-time PCR, sequenziamento e ricerca di SNPs e VNTR. Analisi dei risultati.

• Qualifica conseguita Abilitazione alla professione di Biologo

• Date (da – a) Da Ottobre 2011- Luglio 2013

• Nome e tipo di istituto di istruzione

o formazione Università degli Studi di Udine- Corso di laurea magistrale in Biotecnologie Mediche

• Principali materie / abilità

professionali oggetto dello studio Applicazione delle principali metodologie di identificazione, selezione e differenziazione di cellule staminali, finalizzate alla loro applicazione in tecniche di riparazione/ rigenerazione di vari organi/tessuti sia in modelli animali che nell’uomo. Progettazione e conoscenza dei principi di biocompatibilità, integrazione, degradazione biologica e le possibilità applicative dei biomateriali nelle diverse specialità medico-chirurgiche, con particolare riguardo a quelle di interesse della medicina molecolare e

rigenerativa. Impiego delle metodologie proprie delle biotecnologie cellulari, molecolari e di trasferimento genico al fine di identificare e validare bersagli terapeutici e approcci diagnostici innovativi per la medicina molecolare, l’oncologia e la medicina rigenerativa. Conoscenza delle metodologie in ambito cellulare e molecolare delle biotecnologie per la riproduzione, sia in campo sperimentale che clinico. Conoscenza delle patologie di interesse medico e chirurgico, congenite o acquisite, nelle quali sia possibile intervenire con approccio biotecnologico, con particolare riguardo a quelle in cui è prevedibile lo sviluppo di

tecnologie molecolari innovative e l’applicazione di cellule staminali.

Focus sull’ analisi di biomarcatori circolanti in pazienti con tumore metastatico della mammella.

• Qualifica conseguita Laurea Magistrale in Biotecnologie Sanitarie classe N. IX/S

• Date (da – a) Da Ottobre 2007- Luglio 2011

• Nome e tipo di istituto di istruzione

o formazione Università degli Studi di Udine- corso di Laurea in Biotecnologie Mediche

• Principali materie / abilità professionali oggetto dello studio

Conoscenza, in termini applicativi dell'attività di laboratorio biomolecolare e diagnostico, anche in merito alle norme che si applicano nel settore biotecnologico riguardo aspetti tecnici,

economici, giuridici e bioetici. Conoscenza dei sistemi biologici, interpretati in chiave molecolare, cellulare e genomica.

• Qualifica conseguita Laurea in Biotecnologie Medico-sanitarie

• Date (da – a) Da 2002–2007

• Nome e tipo di istituto di istruzione

o formazione Istituto Magistrale Statale “C. Percoto”, Udine

• Principali materie / abilità

professionali oggetto dello studio Pedagogia, sociologia e psicologia

• Qualifica conseguita Docente/educatore scuola dell’infanzia

MADRELINGUA ITALIANO

INGLESE/FRANCESE

C

Abilità ed attitudine a stabilire e gestire rapporti con altre persone siano esse colleghi di lavoro, superiori o pubblico. Capacità di collaborare in gruppo, di richiedere e/o fornire informazioni in modo chiaro e puntuale, di redigere documenti scritti. Rispetto delle regole dei collaboratori anche a distanza.

Esperienza nel trasmettere le proprie conoscenze teorico/pratico a studenti appartenenti a diversi corsi di laurea (tecnici di laboratorio, biotecnologi, biologi, medici).

A

COMPRENSIONE PARLATO PRODUZIONE SCRITTA

Ascolto Lettura Interazione Produzione orale

Inglese B2 C1 B2 B2 B2

Francese B1 B1 A2 A2 A2

Livelli: A1/A2: Livello base - B1/B2: Livello intermedio - C1/C2: Livello avanzato Quadro Comune Europeo di Riferimento delle Lingue

C

di persone, progetti, bilanci).

Puntualità e precisione. Gestione degli aspetti funzionali ed operativi del Laboratorio, gestione degli ordinativi di acquisto di materiali e/o strumentazioni, gestione rapporti con rappresentanti e fornitori, verifica consegne e spedizioni.

CAPACITÀ E COMPETENZE PROFESSIONALI Acquisite nel corso della vita e della

carriera ma non necessariamente riconosciute da certificati e diplomi ufficiali

.

FASE PREPARATIVA DEI CAMPIONI:

- Manipolazione e processazione di campioni biologici di diversa natura (ematici, urine, broncoaspirati, liquidi di versamento, liquor, liquido di cisti o bolle, materiale citologico cervicovaginale, piccole e grandi biopsie).

- Fissazione con diverse metodiche (chimiche, fisiche) compatibili con le successive colorazioni

- Inclusione in paraffina di campioni istologici o citologici (citoinclusi).

- Taglio di sezioni per colorazioni istochimiche/immunoistochimiche e per biologia molecolare partendo da preparati FFPE (fissati in formalina e inclusi in paraffina).

- Arricchimento di plasma o siero da sangue periferico. Estrazione di acidi nucleici.

- Centrifugazione su gradiente di densità (FICOL) per isolamento della frazione mononucleata del sangue periferico (PBMC) e midollare.

ISOLAMENTO DI ACIDI NUCLEICI PER SUSSEGUENTI ANALISI MOLECOLARI:

- Estrazione di DNA da tessuti a fresco, congelati o da FFPE e da sangue periferico con successiva purificazione in colonna. Quantificazione allo spettrofotometro

- Estrazione di RNA e miRNA mediante Trizol e cromatografia su colonna: quantificazione, trattamento con DNasi e retrotrascrizione in cDNA.

- Isolamento e purificazione di DNA e RNA circolante da plasma o siero.

GENETICA ONCOLOGICA E MOLECOLARE

- Preparazione di library per analisi NGS con piattaforma Illumina MiSeq e Ion Torrent - Analisi NGS di varianti somatiche/germinali

- Analisi di espressione genica mediante Real-time qPCR Lightcycler Roche 480 - Analisi mutazionale mediante ddPCR (droplet digital PCR).

- Ricerca status mutazionale del gene KRAS e del gene NRAS per selezionare tra i pazienti con carcinoma del colon retto metastatico quelli da sottoporre a terapia con anticorpi monoclonali.

- Ricerca status mutazionale del gene PI3CA per selezionare tra i pazienti con carcinoma del colon retto metastatico quelli da sottoporre a terapia adiuvante con aspirina.

- Ricerca status mutazionale del gene EGFR e KRAS per selezionare tra i pazienti con carcinoma del polmone non a piccole cellule da sottoporre a terapia con anticorpi monoclonali.

- Ricerca status mutazionale del gene BRAF, NRAS e cKIT, per selezionare tra i pazienti con melanoma metastatico quelli da inviare a terapia con anticorpi monoclonali.

- Ricerca delle mutazioni di IDH1/2 mediante REAL-TIME PCR utili sia come valore diagnostico (per la diagnosi differenziale dei gliomi e per discriminare tra glioblastomi primari e secondari) ma anche come valore prognostico di follow up.

- Ricerca delle mutazioni del promotore di h-TERT mediante REAL-TIME PCR e sequenziamento SANGER nei glioblastomi.

- Analisi dello stato di metilazione del promotore di MGMT mediante pirosequenziamento, predittiva di risposta agli agenti alchilanti nel trattamento del glioblastoma.

- Ricerca dello status mutazionale di C-KIT e PDGFRA per la prognosi dei tumori e

l’indirizzo alla terapia nei tumori gastrointestinali stromali (GIST).

- Analisi dello stato mutazionale di EGFR su biopsia liquida mediante REAL TIME PCR e pirosequenziamento, in pazienti con carcinoma al polmone metastatico da sottoporre a terapia target.

- Ricerca del papilloma virus (HPV) e genotipizzazione su campione da tumore testa collo per indirizzare il paziente a terapia radiologica.

- Analisi dell’instabilità di microsatelliti.

-Analisi dei frammenti mediante elettroforesi capillare

DIAGNOSTICA MOLECOLARE DEI LINFOMI

- Analisi della clonalità B: ricerca del riarrangiamento delle catene pesanti e delle catene leggere Kappa e Lambda delle immunoglobuline.

- Analisi della clonalità T: ricerca del riarrangiamento del TCR, Gamma, Beta e Delta TCR.

CITOFLUORIMETRIA - Colorazione diretta su sangue intero e su frazione mononucleata del sangue periferico per la determinazione del numero assoluto di una popolazione cellulare.

- Colorazioni intracellulari su sangue intero, su liquidi corporei e BAL (liquido lavaggio

bronco-alveolare) - Colorazioni dirette su sangue intero e intracellulari per determinale le catene leggere

Kappa e Lamda.

- Tipizzazione linfocitaria standard: conta assoluta delle normali sottopopolazioni

linfocitarie.

– Valutazione del test di attivazione dei basofili (protocollo allergie).

– Preparazione di strisci di sangue per l’applicazione di protocolli di biologia molecolare o colorazioni (May-Grunwald Giemsa).

CITOLOGIA - Allestimento di preparati citologici: prefissazione in Cytolyt- PreserveCyt solution di

agoaspirati e altri prelievi in sospensione; prefissazione in Cytorich Red Collection Fluid per versamenti cavitari; fissazione in etanolo 95% e citoinclusione (formalina tamponata 4%) di frustoli in espettorati o broncoaspirati; fissazione all’aria o in etanolo 95% per

prelievi citologici strisciati su vetrino.

– Citocentrifugazione.

– Allestimento preparati mediante ThinPrep 2000-5000.

– Colorazioni citochimiche manuali e automatizzate (Ematossilina Eosina, May-Grunwald Giemsa, Papanicolau).

– Indagini immunocitochimiche per la determinazione di marcatori cellulari per diagnosi differenziale di cellule atipiche. Pannelli anticorpali per la distinzione di marcatori immunofenotipici tra adenocarcinoma e carcinoma a cellule squamose del polmone e tra carcinoma a cellule squamose poco differenziate e carcinoma a piccole cellule del polmone; caratterizzazione della carcinosi peritoneale per identificazione organo sede del

tumore primitivo (mammella, polmone, ovaio, colon-retto, fegato, rene, prostata, stomaco).

– Nozioni di base di lettura di preparati citologici per identificazioni di atipie e di strisci

cervicali Pap-Test.

– Indagini citogenetiche mediante HER2-neu FISH test su campioni citologici mammari e gastrici per la determinazione dello stato di amplificazione del gene HER2-neu e

Urovysion-FISH test su campioni di urina per la diagnosi e il follow up del tumore delle vie urinarie (principalmente della vescica). Lettura dei risultati al microscopio a fluorescenza.

NELL’AMBITO DI PROGETTI DI RICERCA SPECIFICI:

- Isolamento e coltura di cellule tumorali, staminali e mesenchimali da tessuti umani,

sangue periferico e midollare.

- Coltura e propagazione di cellule immortalizzate, adese ed in sospensione.

- Estrazione di DNA genomico, plasmidico, controllo su gel tramite digestione con enzimi di restrizione, purificazione da gel d’agarosio e acrilammide.

- Saggi di attività trascrizionale.

- Amplificazione di DNA tramite PCR.

- Tecniche di trasfezione del DNA sia per trasfezioni stabili che transienti: metodo del calciofosfato, DEAE-destrano, uso liposomi, elettroporazione.

- Silenziamento genico mediante iRNA.

- Purificazione di RNA messaggero (poly A+).

- Estrazione di RNA totale da cellule e tessuti d’origine animale ed umana.

- Estrazione di DNA da sangue, tessuti fissati e da biopsia liquida.

- Cell sorting mediante DEPArray e FACS ARIA III.

- Isolamento e purificazione di miRNA ed esosomi da plasma di pazienti.

- Analisi respirometrica ad alta sensibilità per la valutazione funzionale del metabolismo ossidativo. (Misure polarografiche).

- Separazione elettroforetica su gel native (BN page) o SDS page per analisi di proteomica funzionale di complessi proteici;

- Messa a punto e successiva applicazione di tecniche di “colony formation” e “soft agar”

per studi di trasformazione tumorale;

- Saggi di immunofluorescenza e immunoistochimica su cellule e su tessuti fissati ed inclusi in paraffina (FFPE).

- Analisi DNA e RNA mediante PCR, sequenziamento, pirosequenziamento, Real Time PCR e ddPCR.

- Saggi funzionali in vitro

- Pianificazione di esperimenti e analisi critica dei risultati. Capacità di revisionare la letteratura scientifica. Organizzazione autonoma del lavoro.

- Analisi statistica dei risultati ottenuti e valutazione dell’attendibilità delle misurazioni effettuate (standardizzazione interna).

CONTROLLI DI QUALITA’

- Valutazione sensibilità e specificità di kit diagnostici per la standardizzazione dei risultati.

COMPETENZE TECNICHE

C

,

,

,

.

- Uso pacchetto Office, in particolare modo Power Point, Word, Excel, Publisher.

Conoscenza di Internet e dei principali browser di ricerca e della posta elettronica. Utilizzo di programmi di elaborazione grafica specifici (Paint, Photoshop), software per l’analisi statistica (Prism).

- Utilizzo dei programmi di ricerca bibliografica.

- Utilizzo di software per disegno primers per PCR e assay mutazionali (Primer Blast/

Primer 3/Thermofisher) e di analisi di sequenze genomiche (FINCH TV/PeakScan).

- Uso Real Time PCR (Lighcycler 480 Roche e Applied Biosystems).

- Uso piattaforme NGS Illumina e Ion Torrent con rispettivi software di analisisecondaria e terziaria (Illumina, Ion Suite, CLC genomic workbench, Gene Globe, Alissa, Tgex, enGenome eVai, QCI interpreter, Ingenuity…)

- Uso pirosequenziatore e software analisi.

- Uso Rotor-gene Qiagen per Real time e PCR pre-sequenziamento.

- Uso sequenziatore 8/24 capillari.

- Microscopia ottica e a fluorescenza. Uso del software Leica LAS AF.

- Citofluorimetria: uso di FACS Canto II (Software FACS Diva), FACS Calibur (Software CellQuest) e FACS Aria III (Diva). Analisi mediante software Summit e Kaluza.

- Tecniche di sterilizzazione (filtrazione, autoclave) e lavoro in condizioni di sterilità (a fiamma e uso cappe a flusso laminare).

- Uso del microtomo

- Uso DEPArray per cell sorting.

- Uso ThinPrep 2000 e 5000 per citologia e coloratrici.

- Tecnologia MACS per arricchimenti immunomagnetici.

- Uso droplet-digital PCR Biorad (QuantaSoft software)

- Uso PCR, termociclatori e prerarazione gel agarosio/acrilammide per analisi risultati.

P

Patente B

U

1. Application of an Artificial Intelligence Algorithm to Prognostically Stratify Grade II Gliomas. Daniela Cesselli, Tamara Ius, Miriam Isola, Fabio Del Ben, Giacomo Da Col, Michela Bulfoni, Matteo Turetta, Enrico Pegolo, Stefania Marzinotto, Cathryn Anne Scott, Laura Mariuzzi, Carla Di Loreto, Antonio Paolo Beltrami and Miran Skrap. Cancers Dec 2019

2. Dysmetabolic circulating tumor cells are prognostic in Metastatic Breast Cancer.

Giulia Brisotto, Eva Biscontin, Elisabetta Rossi, Michela Bulfoni, Aigars Piruska, Simon Spazzapan, Cristina Poggiana, Ric cardo Vidotto, Agostino Steffan, Alfonso Colombatti, Wilhelm Huck, Daniela Cesselli, Rita Zamarchi, Matteo Turetta, Fabi o Del Ben. Under revision Cancers 2020

3. Autophagy and Inflammasome Activation in Dilated Cardiomyopathy. Caragnano A, Aleksova A, Bulfoni M, Cervellin C, Rolle IG, Veneziano C, Barchiesi A, Mimmi MC, Vascotto C, Finato N, Sponga S, Livi U, Isola M, Di Loreto C, Bussani R, Sinagra G, Cesselli D. and Beltrami AP. J Clin Med. 2019

4. Thymic stromal lymphopoietin expression from benign lymphoproliferation to malignant B-cell lymphoma in primary Sjögren’s syndrome S. Gandolfo, M. Bulfoni, C. Fabro, S. Russi, D. Sansonno, C. Di Loreto, D. Cesselli, S. De Vita.

Clinical and Experimental Rheumatology 2019

5. Circulating tumor DNA analysis in breast cancer: Is it ready for prime-time? Giuseppe Buono, Lorenzo Gerratana, Michela Bulfoni, Nicoletta Provinciali, Debora Basile, Mario Giuliano, Carla Corvaja, Grazia Arpino, Lucia Del Mastro, Sabino De Placido, Michele De Laurentiis, Massimo Cristofanilli, Fabio Puglisi. Cancer Treatment Reviews 73 (2019) 73–83

6. Assessment of the Mutational Status of NSCLC UsingHypermetabolic Circulating Tumor Cells. Matteo Turetta, Michela Bulfoni, Giulia Brisotto, Gianpiero Fasola, Andrea Zanello, Eva Biscontin, Laura Mariuzzi, Agostino Steffan, Carla Di Loreto, Daniela Cesselli and Fabio Del Ben. Cancers2018,10, 270;

doi:10.3390/cancers10080270www.mdpi.com/journal/cancers

7. Emerging Technologies for Cancer Research: Towards Personalized Medicine with Microfluidic Platforms and 3D Tumor Models. Matteo Turetta, Fabio Del Ben, Giulia Brisotto, Eva Biscontin, Michela Bulfoni, Daniela Cesselli, Alfonso Colombatti, Giacinto Scoles, Giuseppe Gigli, and Loretta L. del Mercato. Current Medicinal Chemistry, 2018, 25, 4616- 4637

8. Microfluidic droplets content classification and analysis through convolutional neural networks in a liquid biopsy workflow.

Gabriele Soldati, Fabio Del Ben, Giulia Brisotto, Eva Biscontin, Michela Bulfoni, Aigars Piruska, Agostino Steffan, Matteo Turetta, Vincenzo Della Mea. Am J Transl Res 2018;10(12):4004-4016

9. Assessment of the Mutational Status of NSCLC Using Hypermetabolic Circulating Tumor Cells Matteo Turetta, Michela Bulfoni, Giulia Brisotto, Gianpiero Fasola, Andrea Zanello, Eva Biscontin, Laura Mariuzzi, Agostino Steffan, Carla Di Loreto, Daniela Cesselli and Fabio Del Ben. Cancers 10(8):270 · August 2018

10. Integration of lymphocyte ratios (LRs) and circulating tumor cells (CTCs) characterization: The interplay between immunity and metastatic breast cancer (MBC). Lorenzo Gerratana, Michela Bulfoni, Debora Basile, Giacomo Pelizzari, Marta Bonotto, Antonio Paolo Beltrami. DOI: 10.1200/JCO.2018.36.15_suppl.12039 Journal of Clinical Oncology 36, no.

15_suppl (May 20 2018) 12039-12039.

11. Expression and modulation of S100A4 protein by human mast cells Rossana Domenis, David Pilutti, Maria Orsaria, Stefania Marzinotto, Veronica Candotti, Giulia Bosisio, Michela Bulfoni, Maria Elisabetta Ruaro, Carla Di Loreto, Vincenzo Della Mea, Eleonora Toffoletti, Ambrogio P Londero, Laura Mariuzzi, Giorgia Gri. Cellular Immunology 2018

12. Gene expression signatures in circulating tumor cells correlate with response to therapy in metastatic breast cancer.

Michela Bulfoni, Antonio Paolo Beltrami, Daniela Cesselli. JLPM April 2018 DOI10.21037/jlpm.2018.03.01

13. A NF-κB signature predicts low-grade glioma prognosis: a precision medicine approach based on patient-derived stem cells. Ius T, Ciani Y, Ruaro ME, Isola M, Sorrentino M, Bulfoni M, Candotti V, Correcig C, Bourkoula E, Manini I, Pegolo E, Mangoni D, Marzinotto S, Radovic S, Toffoletto B, Caponnetto F, Zanello A, Mariuzzi L, Di

Loreto C, Beltrami AP, Piazza S, Skrap M, Cesselli D. Neuro Oncol. 2017 Dec 7. doi: 10.1093/neuonc/nox234

14. Thymic stromal lymphopoietin (TSLP) in primary Sjogren's syndrome and related lymphoma: the possible contribution of a novel growth factor. Saviana Gandolfo, Cinzia Fabro, Michela Bulfoni, Sabino Russi, Luca Quartuccio, Domenico Sansonno, Carla Di Loreto, Daniela Cesselli, Salvatore De Vita. Annals of the Rheumatic Diseases 76(Suppl 2):1101.2- 1101 · June 2017

15. Preliminary clinical results of a metabolism-based method to detect circulating tumor cells. F. Del Ben, M. Turetta, E.

Biscontin, G. Brisotto, G. Celetti, A. Piruska, M. Bulfoni, D. Cesselli, A. Steffan, A. Colombatti, W. Huck, G. Scoles. EJC 2017

16. Emerging Technologies for Cancer Research: towards Personalized Medicine with Microfluidic Platforms and 3D Tumor Models. Matteo Turetta, Fabio Del Ben, Giulia Brisotto, Eva Biscontin, Michela Bulfoni, Daniela Cesselli, Alfonso Colombatti, Giacinto Scoles, Giuseppe Giglif, Loretta L. del Mercato. Current Medicinal Chemistry 2017

17. Dissecting the Heterogeneity of Circulating Tumor Cells in Metastatic Breast Cancer: Going Far Beyond the Needle in the Haystack. Bulfoni M, Turetta M, Del Ben F, Di Loreto C, Beltrami AP, Cesselli D. Int J Mol Sci. 2016 Oct

18. Functional expression of aryl hydrocarbon receptor on mast cells populating human endometriotic tissues. Mariuzzi L, Domenis R, Orsaria M, Marzinotto S, Londero AP, Bulfoni M, Candotti V, Zanello A, Ballico M, Mimmi MC, Calcagno A, Marchesoni D, Di Loreto C, Beltrami AP, Cesselli D, Gri G. Lab Invest. 2016 Sep;96(9):959-71. doi:

10.1038/labinvest.2016.74.

19. A Method for Detecting Circulating Tumor Cells Based on the Measurement of Single-Cell Metabolism in Droplet-Based Microfluidics. Del Ben F, Turetta M, Celetti G, Piruska A, Bulfoni M, Cesselli D, Huck WT, Scoles G. Angew Chem Int Ed Engl. 2016 Jul 18;55(30):8581-4. doi: 10.1002/anie.201602328.

20. In patients with metastatic breast cancer the identification of circulating tumor cells in epithelial-to-mesenchymal transition is associated with a poor prognosis. Bulfoni M, Gerratana L, Del Ben F, Marzinotto S, Sorrentino M, Turetta M, Scoles G, Toffoletto B, Isola M, Beltrami CA, Di Loreto C, Beltrami AP, Puglisi F, Cesselli D. Breast Cancer Res. 2016 Mar 9;18(1):30. doi: 10.1186/s13058-016-0687-3.

21. Glucose is a key driver for GLUT1-mediated nanoparticles internalization in breast cancer cells. Venturelli L, Nappini S, Bulfoni M, Gianfranceschi G, Dal Zilio S, Coceano G, Del Ben F, Turetta M, Scoles G, Vaccari L, Cesselli D, Cojoc D.Sci Rep. 2016 Feb

22. Exploring and characterizing circulating exosomes in metastatic breast cancer patients Gerratana L, Toffoletto B, Bulfoni M, Cesselli D, Beltrami AP, Di Loreto C, Bonotto M, Cinausero M, Isola M, Marzinotto S, Minisini AM, Sottile R, Mansutti M, Fasola G, Puglisi F. Poster: “European Breast Cancer Conference 2016”

23. CTC subpopulations in metastatic breast cancer Bulfoni M, Gerratana L, Puglisi F, Beltrami AP, Di Loreto C, Bonotto M, Cinausero M, Bozza C, Isola M, Toffoletto B, Marzinotto S, Minisini AM, Sottile R, Banzi M, Peruzzi E, Mansutti M, Fasola G, Cesselli D. 17th AIOM National Cancer Congress 2015

24. Look up the meaning of distinct circulating tumor cells in metastatic breast cancer Bulfoni M, Gerratana L, Puglisi F, Beltrami AP, Di Loreto C, Bonotto M, Cinausero M, Bozza C, Isola M, Toffoletto B, Marzinotto S, Minisini AM, Sottile R, Banzi M, Peruzzi E, Mansutti M, Fasola G, Cesselli D. 40th ESMO European Cancer Congress 2015.

25. Isolation and characterization of circulating tumor cells, in their epithelium-to-mesenchymal transition, from metastatic breast cancer patients Bulfoni M, Marzinotto S, Beltrami CA, Beltrami AP, Cesselli D. PROTEO event -Trieste

26. Enrichment and Isolation of Live Epithelial-like and Mesenchymal-like CTC from the Peripheral Blood of MBC patients Bulfoni M, Marzinotto S, Beltrami CA, Beltrami AP, Cesselli D. DEPArray -User Meeting, Bologna 2014

27. Isolation and characterization of Live CTCs from the Peripheral Blood of patients with metastatic breast cancer. Bulfoni M, Cesselli D, Del Ben F, Turetta M and Scoles G. F.R.S, in collaboration with W. Huck and A. Piruska. 18th Monalisa Quidproquo Festival

28. Isolation and characterization of circulating tumor cells (CTC) in metastatic breast cancer patients by Deparray Bulfoni M, Toffoletto B, Sorrentino M, Marzinotto S, Candotti V, Puglisi F, Beltrami AP, Cesselli D, Beltrami CA, Di Loreto L.

Adriatic Society of Pathology 29^th International Meeting 2014

Udine, 15 Marzo 2020

Autorizzo il trattamento dei miei dati personali ai sensi del Decreto Legislativo 30 giugno 2003, n. 196 "Codice in materia di protezione dei dati personali "